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DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):基因克隆:感受態(tài)細(xì)胞制作

2013-8-6  閱讀(1780)

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方法一

A液:1M,MnCl2

B液:1M,HEPES,pH=6.2-6.8,用無菌水配,配后不需滅菌;

C液 稱取CaCl2 0.10g,KCl 1.18g,全部轉(zhuǎn)入細(xì)口試劑瓶,然后加入46ml三蒸水,輕輕振蕩使所有組分充分溶解。將瓶塞蓋上并用牛皮紙、棉線包扎,然后放入滅菌鍋121℃高壓滅菌備用。

取1管B液(0.6ml),全部加入C液(46ml)中,混勻后,再用1ml移液器加入3.3ml A液,混勻冰浴即可使用。

劃線得到單菌落,37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)約17小時(shí), 挑取2-4個(gè)形態(tài)飽滿的單菌落接種于裝有100ml SOB 培養(yǎng)基的三角瓶,37℃劇烈振蕩(300 rpms)培養(yǎng)3-4小時(shí),將培養(yǎng)溫度調(diào)至18℃劇烈振蕩(3280 rpms)培養(yǎng),其余與普通感受態(tài)差不多,每管加入4ml TB緩沖液,輕輕振蕩,使菌體重新懸浮,加入280ml DMSO(可用國產(chǎn)分析純),混勻后分裝入1.5ml EP管,冰上靜置15分鐘。用紗布將所有裝有感受態(tài)的EP管包好,用棉線系好后放入液氮中速凍,在液氮中靜置12小時(shí)以上。取出感受態(tài)放入-70℃超低溫冰箱備用。

效率非常高,一般可到10*8,好時(shí)可到10*9,特別適宜于大片段與文庫構(gòu)建及珍貴材料的連接轉(zhuǎn)化。

潔凈是zui重要的。無菌都無所謂,在操作臺(tái)上可正常操作。離心力要注意不要超過2500g,建議1500-2000g 5min。涂板要注意,不要覺得不勻而多次反復(fù),輕輕在平板上帶一下感覺板上大部分地方走過即可,特別在冰箱中保存過或在溫箱中溫浴2小時(shí)以上的板。涂完后建議空氣晾干(20-30分鐘)這樣會(huì)減少衛(wèi)星菌落出現(xiàn)。

預(yù)冷是必要的。整個(gè)過程的低溫也并非特別重要,只要注意就行了,我在去殘液時(shí)經(jīng)常在室溫倒置1min,對(duì)感受態(tài)效率提高有幫助,*次多加一點(diǎn)緩沖液,我經(jīng)常加至20ml,效果不錯(cuò)。

關(guān)于大腸桿菌的感受態(tài)制備及轉(zhuǎn)化的方法很多,zui復(fù)雜的莫過于電轉(zhuǎn)化,而zui簡(jiǎn)單的則是將LB平板上的菌落直接挑入裝有緩沖液的EP管冰箱即開始轉(zhuǎn)化。對(duì)于做克隆工作的人而言,高而穩(wěn)定的感受態(tài)可減輕不少麻煩。

現(xiàn)在大腸桿菌轉(zhuǎn)化效率zui高的要數(shù)電轉(zhuǎn)化,可達(dá)到1010,但是操作起來比較麻煩。要想又簡(jiǎn)單,又能有較高的轉(zhuǎn)化效率,的莫過于1990年《gene》上刊登的由Inoue H.等提出的感受態(tài)的制備與轉(zhuǎn)化方法。

根據(jù)實(shí)驗(yàn)室的實(shí)際情況,我們將其稍作修改,做成了GLP文件,但其中仍有許多可改進(jìn)或需要注意的地方,其中有一些對(duì)普通感受態(tài)效率的提高也有一定的幫助。

1、所用器具的潔凈程度。這一點(diǎn)非常重要,是所有與感受態(tài)有關(guān)的方法與文章上必講的,毋庸置疑。

2、培養(yǎng)基的裝量:培養(yǎng)基的裝量是很重要的,這關(guān)系到菌體生長過程中的能量代謝問題,是有氧還是無氧生長。厭氧生長出來的菌體是做不出效率高的感受態(tài)的。建議裝量不要高于此值為:培養(yǎng)基體積/三角瓶容量=100ml/500ml,50ml/250ml。

3、培養(yǎng)基的pH值。這是講的pH值并非單指配置或滅菌后的pH值,而且還包括整個(gè)搖瓶結(jié)束后的pH值。一般來說,接種前的pH值在6.8-7.2,等菌搖好后,可以測(cè)一下pH值,不要低于6.0,在6.5以上。這表示菌體的代謝為有氧代謝,生長狀態(tài)良好,按要求做,肯定效率不低。

4、培養(yǎng)后的OD值。其實(shí)這并一個(gè)非常重要的參數(shù),只是當(dāng)OD值大到一定的程度后,菌體要保持對(duì)數(shù)生長已經(jīng)不太可能,因此很多指導(dǎo)方法上強(qiáng)調(diào)OD不得大于0.6,0.8等等。同時(shí),OD值大時(shí)菌體總量大,因而感受態(tài)數(shù)量要大一點(diǎn),因而需要在OD值的兩方面影響中找一個(gè)平衡點(diǎn)。

5、培養(yǎng)基中的各種離子。經(jīng)驗(yàn)證明,當(dāng)培養(yǎng)基中存在一定量的Mg2 離子時(shí),該方法制得的感受態(tài)要相對(duì)較高。在制備普通感受時(shí),使用20mM MgCl2做為培養(yǎng)基的添加物,在感受態(tài)收獲之前20-30分鐘加入,會(huì)收到很好的效果。

6、培養(yǎng)溫度。文獻(xiàn)及經(jīng)驗(yàn)告訴我們,較低的溫度培養(yǎng)有利于感受態(tài)的形成,這樣可以獲得較高的感受態(tài),但太低又不實(shí)用,因而產(chǎn)生了Inoue的感受態(tài)制備方法,它實(shí)際是利用了所有有利于感受態(tài)的文獻(xiàn)而得出的一個(gè)非常理想方法。

7、此外文獻(xiàn)報(bào)道,在保存感受態(tài)時(shí),DMSO要比的效果要好,它會(huì)使感受態(tài)的效率增加。

8、液氮速凍也會(huì)使感受態(tài)的效率提高,因此推薦用液氮速凍感受態(tài),然后保存于超低溫冰箱內(nèi)。至于在液氮中保存12小時(shí)以后再轉(zhuǎn)入超低溫冰箱,這點(diǎn)未做實(shí)驗(yàn),只是一種感覺,*次這樣做了,沒問題,以后就照此辦理而已。

方法二

1.液氮或低溫冰箱中取出的大腸桿菌*E.COLI DH5,JM109,HB101等,在LB平板上劃線,37度至長出單菌落。

2.挑直徑1-3毫米的單菌落*可多個(gè),接種到250毫升/3升錐形瓶 或80毫升/1升錐形瓶的SOB培養(yǎng)基. 培養(yǎng)基量不可再多,會(huì)影響效率。

3.在18度150-250RPM 培養(yǎng)19-50小時(shí)*沒有冷卻搖床的可在室溫,但不可高于37度。

4.OD600約0.4-0.8時(shí)停止培養(yǎng),放在冰水中冷卻10分鐘。

5. 4度,300RPM離心15分鐘,回收菌體。

6.去掉上清后,用1/3體積的冰冷TB溶液懸浮,在冷10分鐘。

7.再次離心回收菌體。

8.用1/12.5體積的TB懸浮,添加zui終濃度為7%的DMSO,再冷卻10分鐘。

9.0.1 -1毫升分裝,直接在液氮中凍上。

10.在液氮或-80度保存。

【zihudie 】

(1)將置于液氮保存的大腸桿菌劃線在LB平板上,37℃培養(yǎng)活化。

(2)挑取經(jīng)活化的大腸桿菌單菌落于SOC液體培養(yǎng)基,18℃,200-250rpm培養(yǎng)。

(3)當(dāng)OD600=0.5-0.8時(shí),用預(yù)冷的40mL離心管于4℃,8000rpm離心10min,收集菌體。

(4)用預(yù)冷的TB Buffer重懸菌體,4℃,8000rpm離心10min,收集菌體。

(5)重復(fù)第4步操作。

(6)用8mL預(yù)冷的TB Buffer重懸菌體,緩慢加入DMSO至終濃度7% 。

(7)冰浴10min后,分裝保存于液氮中。

本法效率*,建議大家采納

【yog】

1. 單菌落-------2ml LB 37度 120RPM-----1%轉(zhuǎn)接-------37度 200RPM2小時(shí)(OD到0.4~0.5)

2. 2ml,冰浴15min,4度,6000RPM 5min,棄上清,懸浮于1ml0.1MCaCl2 中,冰浴20min

3. 4度,6000RPM 10min,重懸浮于200μl0.1MCaCl2中,冰浴30min

建議用TSS法,簡(jiǎn)單方便,比氯化鈣法的轉(zhuǎn)化效率高.別的菌可能不一定適用。

以下為轉(zhuǎn)貼,具體方法請(qǐng)查閱文獻(xiàn)。

E.coli感受態(tài)細(xì)胞制備方法:

單菌落平板至2ml LB,37℃ 250 r/m,1ml 轉(zhuǎn)至50 ml LB,37℃ 250 r/m至 A600=0.2-0.4

離心后用10毫升TSS重懸后,分裝 -70℃保存。盡量冰上操作.

轉(zhuǎn)化: 加質(zhì)粒(<5 ul/100μlcell) 后冰上30分鐘,42℃ 90秒,冰上2分鐘,加LB至1ml,37℃ 1小時(shí)后鋪抗生素平板。

TSS:

7.0ml pH6.1 LB

2.0ml 50% PEG6000

0.5ML dmso

0.2ML Mg2 (0.1ml 1mol/l MgCl2 and 0.1ml 1mol/l MgSO4

0.3ml ddH2O

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