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  • 原代培養(yǎng)經(jīng)驗(yàn)分享

    經(jīng)驗(yàn)分享:1.原代細(xì)胞鋪満瓶底后棄原液,PBS沖洗2次。2.加入0.25%Trypsin-0.02%EDTA,量覆蓋瓶底即可,室溫作用,鏡下觀察至組織塊周圍的細(xì)胞回縮,立體感增強(qiáng)。3.棄去消化液,PBS輕漂一遍(目的是除去EDTA,它對脆弱的原代細(xì)胞很不好)但不要用力搖晃,以免部分消化稍過的細(xì)胞流失。4.加入培養(yǎng)液吹打,不要產(chǎn)生氣泡,對細(xì)胞有損。5.吸出2/3的懸液傳入新瓶。6.向原瓶中余下的1/3細(xì)胞懸液中補(bǔ)加2/3的新培養(yǎng)液,與未消化的組織塊繼續(xù)培養(yǎng)。7.24小時內(nèi)新的細(xì)胞又從組織塊中爬出啦
  • 體外細(xì)胞的原代培養(yǎng)、凍存和復(fù)蘇,傳代培養(yǎng)

    三、實(shí)驗(yàn)結(jié)果計算1.一只小鼠可獲得(1~2.5)×108個脾細(xì)胞。2.細(xì)胞接種后一般幾小時內(nèi)就能貼壁,并開始生長,如接種的細(xì)胞密度適宜,5天到一周即可形成單層。3.一般情況,傳代后的細(xì)胞在2小時左右就能附著在培養(yǎng)瓶壁上,2~4天就可在瓶內(nèi)形成單層,需要再次進(jìn)行傳代。四、注意事項(xiàng)1.取材要求新鮮,無菌,解剖小鼠時,注意不要損傷脾臟及其周圍的臟器,尤其是腸道等,防止污染脾臟。2.沖洗脾臟時要盡量洗凈血污,去除無用組織,并要防止組織干燥。3.碾磨后及時用清水沖洗篩網(wǎng),防止組織、細(xì)胞阻塞網(wǎng)孔。4.計數(shù)前
  • 體外細(xì)胞的原代培養(yǎng)、傳代培養(yǎng)、凍存和復(fù)蘇2

    一、實(shí)驗(yàn)原理細(xì)胞培養(yǎng)可分為原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)。直接從體內(nèi)獲取的組織細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)為原代培養(yǎng);當(dāng)原代培養(yǎng)的細(xì)胞增殖達(dá)到一定密度后,則需要做再培養(yǎng),即將培養(yǎng)的細(xì)胞分散后,從一個容器以1:2或其他比率轉(zhuǎn)移到另一個或幾個容器中擴(kuò)大培養(yǎng),為傳代培養(yǎng),傳代培養(yǎng)的累積次數(shù)就是細(xì)胞的代數(shù)。細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,實(shí)驗(yàn)證明這樣可以zui大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或DMSO作保護(hù)劑,這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對水的通透性,加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而減少
  • 定量PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)分享1

    1.如果擴(kuò)增曲線ct值比較靠后的話,32左右,一般有什么方法解決沒有ct值比較靠后,對實(shí)驗(yàn)有一定的影響,因?yàn)榻?jīng)過那么多次的循環(huán),酶的活性有可能有所下降,這時候擴(kuò)增效率會有所改變(而定量PCR的理論基礎(chǔ)就是每次循環(huán)的擴(kuò)增效率我們認(rèn)為是確定的一個值)。因此能夠把ct值往前移。解決辦法可以將模板加以濃縮或者抽干之后用少量水去溶解。2.為什么合成的引物做不加摸板的對照也能擴(kuò)增出目的條帶,而內(nèi)參用同樣體系就沒有呢?引物被污染。3.實(shí)時定量PCR,熒光定量PCR,實(shí)時熒光定量PCR,real-timePCR
  • 實(shí)時熒光定量PCR具體實(shí)驗(yàn)步驟1

    1樣品RNA的抽提①取凍存已裂解的細(xì)胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。②兩相分離每1ml的TRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2ml的仿,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,15到30℃孵育2到3分鐘。4℃下12000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚仿相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。③RNA沉淀將水相上層轉(zhuǎn)移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后15到30℃孵育10
  • 單細(xì)胞凝膠電泳標(biāo)準(zhǔn)操作3

    實(shí)驗(yàn)原理在細(xì)胞核中,DNA是環(huán)狀附著在核基質(zhì)上,細(xì)胞裂解過程中,核基質(zhì)被溶解、抽提,DNA的結(jié)構(gòu)則未發(fā)生變化。如果DNA鏈上存在缺口,則使DNA超螺旋變的松弛,DNA環(huán)向外展,同時由于暴露了陰電荷,在電場力的作用下,松動的DNA環(huán)向陽極遷移,但是由于這種松動的DNA環(huán)一端仍附著于核DNA,其遷移距離受到限制,因此尾長并不總是真實(shí)反映鏈缺口的多少。實(shí)際應(yīng)當(dāng)依靠尾長與尾部的熒光強(qiáng)度同時來進(jìn)行分析。實(shí)驗(yàn)步驟1.分離制備單細(xì)胞懸液:1)體外培養(yǎng)的細(xì)胞株:用胰酶消化,吹打成單細(xì)胞懸液;2)體內(nèi)臟器細(xì)胞:處
  • 多克隆抗體的免疫電泳操作流程

    實(shí)驗(yàn)原理免疫電泳又稱為γ球蛋白電泳或免疫球蛋白電泳技術(shù),這是一種能夠判斷血液中三種免疫球蛋白IgM,IgG,IgA含量水平的實(shí)驗(yàn)方法。在這項(xiàng)實(shí)驗(yàn)技術(shù)中,首先利用蛋白質(zhì)的分子量和所帶電荷的比值運(yùn)用水平瓊脂糖凝膠電泳技術(shù)將蛋白質(zhì)進(jìn)行分離,然后將特異性的抗體引入到與電泳方向平行的凹槽中,在抗原和抗體的擴(kuò)散過程中,抗原和抗體適當(dāng)比例的結(jié)合會導(dǎo)致沉淀的產(chǎn)生。0.85%鹽不僅可以終止擴(kuò)散過程也可用于洗去未結(jié)合的蛋白,抗原和抗體結(jié)合所形成的沉淀線即可以肉眼觀察也可利用染色方法觀察。免疫電泳技術(shù)不僅可用于血清或
  • PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的鑒定

    實(shí)驗(yàn)原理生物大分子如蛋白質(zhì)、核酸、多糖等常以顆粒分散在溶液中.它們的凈電荷取決于介質(zhì)的H濃度或與其他大分子的相互作用。在電場中,帶電顆粒向陰極或陽極遷移.遷移的方向取決于它們帶電的符號.這種遷移現(xiàn)象即謂電泳。遷移的方式目前可以根據(jù)分子尺寸大小、分子所帶的電荷或分子的生物學(xué)與化學(xué)特性分為三類。如果把生物大分子的膠體溶液放在一個沒有干擾的電場中,使顆粒具有一定遷移速率的驅(qū)動力來自于顆粒的有效電荷Q和電位梯度E。它們與介質(zhì)的摩擦阻力f抗衡:在自由溶液中,這種抗衡服從斯托克斯定律。f=6πrvη這里v是
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