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蛋白質(zhì)技術專題:PPO粗酶液的純化

2013-12-3  閱讀(1149)

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一、原理

1.葡聚糖凝膠SephadexG-200凝膠柱層析利用大分子不能進入凝膠顆粒內(nèi)部zui先流出柱外,而小分子物質(zhì)進入凝膠顆粒內(nèi)部,流速慢而zui后流出柱外,凝膠層析法能將不同分子大小的物質(zhì)分離開。(G-200能分離800-80000D分子量的蛋白質(zhì))

2.利用離子交換法,選取DEAE-陰離子纖維素DE52柱材料,因為PPO是帶有陽離子的蛋白質(zhì),在層析時會吸附在柱材料上,而雜蛋白會洗下。后用NaCl梯度洗脫PPO,(NaCl為強離子交換劑,能將弱吸附在柱材料上的PPO置換下來)。粗酶液從而得到純化。

二、材料與試劑

試劑:0.02MTris-HCL緩沖液Ph7.4(內(nèi)含0.001MEDTA)配制時配×10倍濃縮液1000ml;NaCL;聚已二醇;DEAE-纖維素DE52;葡聚糖凝膠SephadexG-200;蘭葡萄糖-40、70、100等;

實驗器械與儀器設備:試管與試管架、燒杯、玻璃攪棒、移液管、滴管等;試劑瓶、層析柱、pH計和pH試紙、恒流泵、梯度混合儀、核酸蛋白監(jiān)測儀、GL-20C高速冷凍離心機、DL-7A大容量低速冷凍離心機

三、操作步驟

1.葡聚糖凝膠的處理、裝柱及平衡

(1)柱材處理

稱取一定量的SephadexG-200干粉,加無離子水或蒸餾水浸泡溶脹48h,去掉懸浮的細微顆粒,為防止凝膠顆粒中的空氣存在,影響層析效果,凝膠裝柱前一定要將凝膠液中的氣體除掉,其辦法是將凝膠液放進抽濾瓶中,進行抽真空處理,直到凝膠液中沒有氣泡出現(xiàn)為止。

(2)裝柱

將層析柱清洗干凈垂直固定到層析架上,加1/3體積的無離子水,打開下出液口,水流暢通,即刻將小燒杯中裝有適宜濃度的凝膠液(凝膠的濃度過高會產(chǎn)生氣泡,影響蛋白質(zhì)分離速度,濃度過低易產(chǎn)生凝膠分層,影響蛋白質(zhì)的分離效果)輕輕倒入層析柱中,凝膠自然慢慢沉降在層析柱底部,凝膠沉積直到離層析柱上端1.5-2cm處,停止裝柱,剪一與柱內(nèi)徑相等的濾紙片覆蓋于凝膠上。層析柱上端進液口連接恒流泵,下出液口連接蛋白質(zhì)監(jiān)測儀,待層析柱的平衡。

(3)平衡

在柱層析上樣前必須對層析柱進行平衡,所謂平衡就是將層析柱中的溶液用層析過程的緩沖液(洗脫液)置換出來,使層析柱中的緩沖系統(tǒng)與柱層析過程中的系統(tǒng)一致。其方法是:利用層析柱上端的恒流泵將平衡緩沖液泵入到層析柱內(nèi),打開層析柱下端的出口,平衡液流速在0.5-1ml/min,當下出口流出液的PH值與平衡緩沖液的PH值一致時,層析柱達到了平衡。在本實驗中,用0.002MTris-HCL緩沖液PH7.4(內(nèi)含0.0001MEDTA),平衡SephadexG-200凝膠。

2.上樣:將粗酶液上柱。

3.洗脫:用0.02MTris-HCL緩沖液Ph7.4(內(nèi)含0.001MEDTA)洗脫,收集洗脫液進行酶活性、蛋白質(zhì)濃度、聚丙烯酰胺凝膠電泳分子量的基本性質(zhì)分析測定。

4.DEAE-纖維素的處理及裝柱

(1)處理

本實驗采用的是DEAE-纖維素DE52是弱酸型陰離子交換劑,具體處理方法為:先將DE52陰離子交換劑干粉浸泡于蒸餾水中,去除雜質(zhì);再在0.5N的HCL溶液中浸泡1-2h,再用無離子水或蒸餾水洗至pH值中性或PH4以上,并將其在抽濾漏斗中抽干;將抽干的離子交換劑浸泡在0.5N的NaOH溶液中1-2h,再用無離子水或蒸餾水將其洗至中性。

(2)裝柱

將層析柱清洗干凈垂直固定到層析架上,加1/3體積的無離子水,打開下出液口,水流暢通,即刻將小燒杯中裝有適宜濃度的柱材,輕輕倒入層析柱中,凝膠自然慢慢沉降再層析柱底部,凝膠沉積直到離層析柱上端1.5-2cm處,停止裝柱。層析柱上端進液口連接恒流泵,下出口連接蛋白質(zhì)監(jiān)測儀,待層析柱的平衡。

(3)平衡

在柱層析上樣前必須對層析柱進行平衡,所謂平衡就是將層析柱中的溶液用層析過程的緩沖液(洗脫液)置換出來,使層析柱中的緩沖系統(tǒng)與柱層析過程中的系統(tǒng)一致。其方法是:利用層析柱上端的恒流泵將平衡緩沖液泵入到層析柱內(nèi),打開層析柱下端的出口,平衡液流速在0.5-1ml/min,當下出口流出液的PH值與平衡緩沖液的PH值一致時,層析柱達到了平衡。在本實驗中,用0.002MTris-HCL緩沖液PH7.4(內(nèi)含0.0001MEDTA),預先將DE-52柱進行平衡。

5.上樣:

將洗脫酶液上樣,用0.02MTris-HCL緩沖液pH7.4(內(nèi)含0.001MEDTA)洗脫雜蛋白。

6.洗脫:

用含NaCL(0.2-0.6M)的0.02MTris-HCL緩沖液pH7.4(內(nèi)含0.001MEDTA)進行梯度洗脫。

7.測定酶活性和蛋白質(zhì)濃度。

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