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為什么我需要傳代我的細(xì)胞?
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文章描述了一個(gè)典型的工作流程,與細(xì)胞操作需要注意的必要步驟,為了成功地應(yīng)用哺乳動(dòng)物細(xì)胞系,它們必須在受控的條件下生長(zhǎng),并需要自己特定的生長(zhǎng)介質(zhì)。此外,為了保證一致性,必須定期監(jiān)測(cè)它們的生長(zhǎng)情況。當(dāng)細(xì)胞系達(dá)到約80%的合流時(shí),必須傳代培養(yǎng),以確保細(xì)胞的正常生長(zhǎng)和健康。80%的重合性是指培養(yǎng)容器表面的80%被細(xì)胞覆蓋。
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為什么我需要傳代我的細(xì)胞?
細(xì)胞培養(yǎng)一旦開始,由于細(xì)胞數(shù)量的增加、營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消耗和有毒代謝物的增加,它不能無(wú)限期地生長(zhǎng),最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡。此外,研究人員通常對(duì)細(xì)胞要進(jìn)行多次實(shí)驗(yàn),因此不希望一次用完所有的細(xì)胞。傳代或分裂細(xì)胞,通過(guò)去除培養(yǎng)基和轉(zhuǎn)移細(xì)胞到新鮮的生長(zhǎng)培養(yǎng)基,細(xì)胞被給予新鮮的營(yíng)養(yǎng)同事有毒的代謝物也被去除,細(xì)胞就會(huì)被賦予新的活力繼續(xù)生長(zhǎng)。
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細(xì)胞生長(zhǎng)曲線
細(xì)胞在培養(yǎng)液中的生長(zhǎng)曲線由四個(gè)階段組成:生長(zhǎng)開始前的潛伏期(滯后期),指數(shù)生長(zhǎng)期(對(duì)數(shù)期),細(xì)胞數(shù)量快速增長(zhǎng)逐漸放緩的平穩(wěn)期和細(xì)胞死亡的死亡期,這是因?yàn)槿狈I(yíng)養(yǎng)和錯(cuò)誤的生存條件。在對(duì)數(shù)期應(yīng)更換培養(yǎng)基,細(xì)胞在到達(dá)固定期前應(yīng)進(jìn)行傳代,如圖1.
圖一
所以培養(yǎng)細(xì)胞的同學(xué)請(qǐng)注意:
為了保持細(xì)胞的健康和積極生長(zhǎng),有必要更新生長(zhǎng)培養(yǎng)基,并定期傳代。根據(jù)細(xì)胞類型的不同,培養(yǎng)基在對(duì)數(shù)期可以發(fā)生幾次改變。傳代細(xì)胞的最佳時(shí)間是在對(duì)數(shù)期和固定期之間,即細(xì)胞達(dá)到合流之前。
一. 為什么用胰酶?jìng)鞔?xì)胞?
準(zhǔn)備細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)的最常見方法是用胰蛋白酶等蛋白水解酶破壞細(xì)胞間的細(xì)胞與底物的連接。胰蛋白酶與乙二胺四乙酸(EDTA)結(jié)合會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞從生長(zhǎng)表面脫離。胰蛋白酶切斷將細(xì)胞固定在培養(yǎng)皿上的局部粘連,EDTA作為鈣螯合劑。
通過(guò)去除鈣,參與細(xì)胞間相互作用的鈣粘蛋白被破壞,細(xì)胞彼此分離。一旦從生長(zhǎng)表面和周圍細(xì)胞分離,就可以很容易地分離并在新的細(xì)胞培養(yǎng)皿中生長(zhǎng)。
細(xì)胞培養(yǎng)條件和傳代培養(yǎng)方法因細(xì)胞類型而異。圖2描述了細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中的基本步驟。在整個(gè)培養(yǎng)過(guò)程中,在一個(gè)無(wú)污染的環(huán)境中工作是很重要的。在開始、胰蛋白酶化、細(xì)胞計(jì)數(shù)和分裂后都要檢查細(xì)胞。為了取得一致的結(jié)果,保持良好的記錄和文件也很重要。
圖二
二. 3個(gè)步驟確定細(xì)胞是否能夠傳代
①. 將細(xì)胞從培養(yǎng)箱中取出,置于顯微鏡下進(jìn)行快速細(xì)胞檢查。細(xì)胞應(yīng)該每天在顯微鏡下檢查,以確保它們是健康的(沒(méi)有污染,很少死細(xì)胞)和生長(zhǎng)如預(yù)期。
②. 細(xì)胞應(yīng)主要附著在培養(yǎng)皿或燒瓶的底部,而培養(yǎng)基應(yīng)是粉橘色。pH值指示物酚紅在酸化時(shí)變成黃色,這個(gè)時(shí)候需要注意了 ,有兩種情況 一是細(xì)胞的密度過(guò)大,已經(jīng)到了生長(zhǎng)平頂期,二是細(xì)胞里有污染物。
③. 用顯微鏡拍照,記錄好細(xì)胞狀態(tài)對(duì)于保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的一致性非常重要。
三. 傳代我的細(xì)胞
①. 移液器將培養(yǎng)基從細(xì)胞皿移到廢物容器中。用5ml不含鈣和鎂的預(yù)加熱PBS仔細(xì)清洗細(xì)胞多達(dá)三次,以去除殘留培養(yǎng)基中的胎牛血清(FBS)。胎牛血清會(huì)抑制胰蛋白酶。
②. 加入相應(yīng)規(guī)格的預(yù)溫胰蛋白酶/EDTA ,比如:T25瓶 1-2ml左右,輕輕旋轉(zhuǎn)以覆蓋培養(yǎng)皿底部的所有細(xì)胞。
③. 將細(xì)胞在37°C孵育2-3分鐘或者室溫3-5分鐘使其分離。不同的細(xì)胞系需要不同的胰蛋白酶孵育時(shí)間。為避免過(guò)度胰蛋白酶作用損傷細(xì)胞,每隔2分鐘在顯微鏡下檢查一次。待細(xì)胞變得橢圓透亮后,caco-2/hepG2細(xì)胞邊緣開始漂浮時(shí),加雙倍以上*培養(yǎng)基中和,將細(xì)胞懸浮液轉(zhuǎn)移到15ml的試管中,并以1000轉(zhuǎn)/分旋轉(zhuǎn)5min。
④. 抽吸上清,加2ml*培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,分瓶或者凍存。
四. 細(xì)胞計(jì)數(shù):
①. 將100µL細(xì)胞懸液與等量的0.4%臺(tái)盼藍(lán)溶液混合。臺(tái)盼藍(lán)可以選擇性地穿透死細(xì)胞的細(xì)胞膜并將其染成藍(lán)色,但不會(huì)被活細(xì)胞吸收。將蓋片置于計(jì)數(shù)面上,準(zhǔn)備血細(xì)胞計(jì)。
②. 將移液管尖的一端置于蓋玻片邊緣,將細(xì)胞懸浮液裝入計(jì)數(shù)室(每個(gè)計(jì)數(shù)面積約為4µl),輕輕排出細(xì)胞懸浮液。蓋層下的區(qū)域通過(guò)毛細(xì)作用而淤塞。在大多數(shù)情況下,腔室有兩個(gè)計(jì)數(shù)區(qū),可以獨(dú)立加載。
③. 將腔室置于顯微鏡臺(tái)上,聚焦細(xì)胞。計(jì)數(shù)柵的方形圖案因腔體類型的不同而不同。你在這里看到的福克斯-羅森塔爾計(jì)數(shù)室有16個(gè)面積為一平方毫米的區(qū)域,每個(gè)區(qū)域由三道線圍成。每個(gè)方塊又被分成16個(gè)更小的方塊。計(jì)算一個(gè)16平方區(qū)域中的所有單元格,如圖所示。為了避免在區(qū)域的邊緣計(jì)算兩次單元格,只計(jì)算正方形兩邊直線上的那些單元格。在本例中,應(yīng)計(jì)算觸及左上界限的單元格(較粗的紅線)。細(xì)胞觸及的下限值和右限值不應(yīng)被考慮在內(nèi)。將活細(xì)胞和死細(xì)胞按5個(gè)一平方毫米的矩形計(jì)數(shù)。為了進(jìn)行計(jì)算,您需要將所有5個(gè)正方形的計(jì)數(shù)結(jié)果結(jié)合起來(lái)。為了提高測(cè)量精度,還可以計(jì)算計(jì)數(shù)室的額外平方.
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