材料與儀器
SD大鼠
F12 *培養(yǎng)液 胰蛋白酶 Ⅱ型膠原酶 酒精
手術(shù)器械 磁力攪拌器
步驟
一、實驗步驟
1. 拉頸處死24 小時內(nèi)新生的SD大鼠，75%乙醇浸泡5 min，取出頭蓋骨，分離頂骨和額骨，冰生理鹽水液反復(fù)洗滌大鼠乳鼠顱蓋骨標本除去脂肪組織及殘留血，放入另一盛有F12 *培基液的培養(yǎng)皿中再洗滌， 將顱骨剪成2～5 mm2 碎片，將洗滌過的骨碎片用 0.25%胰蛋白酶2 ml 預(yù)消化15 min，以清除纖維組織細胞，棄去上清液(其中主要含成纖維細胞)。
2. 然后以0.1% Ⅱ型膠原酶10 ml，在37℃環(huán)境中消化 20 分鐘，室溫下磁力攪拌消化20 分鐘。靜置數(shù)分鐘，收集消化液，室溫下以1200 rpm離心10 分鐘。去除上清液，用20% 胎牛血清的F12 培養(yǎng)液4 ml 懸 浮細胞，接種于75 ml 培養(yǎng)瓶中，補培養(yǎng)液8 ml 使每瓶液體量達到12 ml；對靜置后沉淀部分可再重復(fù)以膠原酶消化20 分鐘、磁力攪拌消化15 分鐘、離心10 分鐘，將獲得的3 瓶細胞放置于二氧化碳培養(yǎng)箱，在5% CO2，95%空氣，37℃溫度下培養(yǎng)，24 小時后可見細胞貼壁生長，胞質(zhì)開始伸展，換新鮮培養(yǎng)液，以后每隔48 小時換培養(yǎng)液(注：消化視具體情況而定，也可多消化 1 遍)。
3. 原代培養(yǎng)一般接種后第7 天能長滿。傳代時，取生長良好、貼壁松緊適度的成骨細胞 1 瓶，棄去培養(yǎng) 液，傳代時先以 PBS 沖洗 2 遍，加 0.25%胰酶1 ml，室溫下消化3～5 分鐘，將胰蛋白酶液棄去，加 F12 培養(yǎng)液充分吹打8-10 分鐘。將已消化的細胞收集、合并，計數(shù)；用 F12 *培基調(diào)節(jié)至細胞濃度為合適濃 度。一般取2-5 代成骨細胞進行實驗。代數(shù)太多，細胞老化或者分化明顯。
二、結(jié)果
如圖所示，成骨細胞的形狀和成纖維細胞非常相似，但是不同的是，比成纖維細胞更不容易消化，尤 其是傳代次數(shù)多，細胞老化的時候，非常難消化，并且不易消化成單個細胞。
圖1：成骨細胞
圖2：成骨細胞100倍
圖3：成骨細胞形成的礦化結(jié)節(jié)
三、鑒定的方法
1. 堿性磷酸酶(ALP)活性檢測
2. 骨玻璃樣蛋白(BGP)檢測
3. 礦化結(jié)節(jié)檢測
