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   MC1000 8通道藻類在線監(jiān)測(cè)系統(tǒng)由8個(gè)100ml藻類培養(yǎng)試管、水浴控溫系統(tǒng)、LEDs光源控制系統(tǒng)及光密度和溶解氧（選配）在線監(jiān)測(cè)系統(tǒng)等組成，可用于藻類培養(yǎng)與控制實(shí)驗(yàn)、梯度對(duì)比實(shí)驗(yàn)等，適于水體生態(tài)毒理學(xué)研究檢測(cè)、藻類生理生態(tài)研究、水生態(tài)研究等，MC1000 8通道藻類在線監(jiān)測(cè)系統(tǒng)主要功能特點(diǎn)如下：

• 8通道藻類培養(yǎng)，每個(gè)藻類培養(yǎng)試管可培養(yǎng)85ml藻液

• LEDs光源，可對(duì)每個(gè)培養(yǎng)試管獨(dú)立調(diào)節(jié)控制和設(shè)置光強(qiáng)度和時(shí)間，如晝夜變化等

• 光密度在線監(jiān)測(cè)，包括OD680、OD720，監(jiān)測(cè)數(shù)據(jù)自動(dòng)存儲(chǔ)

• 溶解氧在線監(jiān)測(cè)（備選）以測(cè)量分析藻類光合作用等

• 溫度、光照控制可用戶設(shè)置不同的程序模式

• 氣泡混勻：可通過調(diào)節(jié)閥手動(dòng)調(diào)節(jié)氣流量以對(duì)培養(yǎng)試管內(nèi)的藻類進(jìn)行混勻

• 可選配O₂/CO₂監(jiān)測(cè)系統(tǒng)，在線監(jiān)測(cè)藻類光合放氧和CO₂吸收

• 可選配藻類熒光測(cè)量模塊

應(yīng)用領(lǐng)域：

l 多通道同步藻類培養(yǎng)

l 同步梯度脅迫實(shí)驗(yàn)

l 培養(yǎng)條件優(yōu)化

l 控制培養(yǎng)條件與藻類生長動(dòng)力學(xué)監(jiān)測(cè)

儀器型號(hào)：

MC 1000-OD： 8個(gè)通道光源顏色相同，標(biāo)配冷白光LED

MC 1000-OD-WW：8個(gè)通道光源顏色相同，標(biāo)配暖白光LED

MC 1000-OD-MULTI： 8個(gè)通道光源顏色不同，分別為1）紫光405nm，2）藍(lán)紫光450nm，3）藍(lán)光470nm或冷白光，4）暖白光，5）綠光540nm，6）黃橙光590nm，7）紅光640nm，8）遠(yuǎn)紅光730nm。

MC 1000-OD-MIX：每個(gè)通道可配備多8種不同顏色的LED光源，光源顏色可由用戶定制，可選顏色為1）紫光405nm，2）藍(lán)紫光450nm，3）藍(lán)光470nm或冷白光，4）暖白光，5）綠光540nm，6）黃橙光590nm，7）紅光640nm，8）遠(yuǎn)紅光730nm。

技術(shù)指標(biāo)：

• 藻類同步培養(yǎng)通道：8個(gè)

• 培養(yǎng)管容量：100ml，建議大培養(yǎng)容量85ml

• 在線即時(shí)監(jiān)測(cè)參數(shù)：分別監(jiān)測(cè)每個(gè)培養(yǎng)管的OD680和OD720，數(shù)據(jù)自動(dòng)保存到主機(jī)內(nèi)存中，PIN光電二極管檢測(cè)器，665－750nm帶通濾波器

• 精確控溫范圍：標(biāo)準(zhǔn)配置高于環(huán)境溫度5-10℃（與光強(qiáng)有關(guān)）~60℃，可選配15℃-60℃（環(huán)境溫度20℃，需加配制冷單元）

• 加熱系統(tǒng)：150W筒形加熱器

• 水浴體積：5L

• 水浴自動(dòng)補(bǔ)水模塊（選配）：水浴水位因蒸發(fā)降低后可自動(dòng)補(bǔ)水

• 光源系統(tǒng)：全LED光源，可在0-100%范圍內(nèi)調(diào)控，每個(gè)通道的光強(qiáng)可分別獨(dú)立調(diào)控

• MC 1000-OD：標(biāo)配冷白光LED，可選配暖白光、紅光（635nm）或藍(lán)光（470nm）LED；光強(qiáng)0-1000μmol/m²/s可調(diào)， 可升級(jí)至0-2500μmol/m²/s

• MC 1000-OD-WW：標(biāo)配暖白光LED，光強(qiáng)0-1000μmol/m²/s可調(diào)，更高光強(qiáng)可定制

• MC 1000-OD-MULTI：8個(gè)通道光源顏色不同，分別為紫光405nm，藍(lán)紫光450nm，藍(lán)光470nm或冷白光，暖白光，綠光540nm，黃橙光590nm，紅光640nm，遠(yuǎn)紅光730nm；光強(qiáng)0-1000μmol/m²/s可調(diào)

• MC 1000-OD-MIX：每個(gè)通道可配備多8種不同顏色的LED光源，光源顏色可由用戶定制，大光強(qiáng)可達(dá)2500μmol/m²/s

• 控光模式：可靜態(tài)或動(dòng)態(tài)設(shè)置光照程序，如正弦、晝夜節(jié)律、脈沖等

• 控制單元顯示屏：可調(diào)控培養(yǎng)程序和顯示數(shù)據(jù)

• 氣流調(diào)控：通過多管調(diào)節(jié)閥對(duì)8個(gè)培養(yǎng)管手動(dòng)獨(dú)立調(diào)控氣體流量

• OD測(cè)量程序：將主機(jī)內(nèi)存中的OD數(shù)據(jù)下載到電腦中并以圖表形式顯示，數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為TXT或Excel文件

• 

• MC實(shí)時(shí)在線監(jiān)測(cè)分析模塊（含工作站和軟件基礎(chǔ)版或高級(jí)版，選配）

• 同時(shí)控制2臺(tái)MC1000（基礎(chǔ)版）或無限臺(tái)MC1000（高級(jí)版）

• 通過PBR軟件動(dòng)態(tài)調(diào)控光照和溫度模式

• 通過光密度（OD680、OD720）變化實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)藻類生物量

• 對(duì)生長速率進(jìn)行實(shí)時(shí)回歸分析

• 多數(shù)據(jù)管理功能（過濾、查找、多重導(dǎo)出）

• 可將測(cè)量數(shù)據(jù)、培養(yǎng)程序和其他信息保存到數(shù)據(jù)庫中

• 通過GUI圖形用戶界面設(shè)置培養(yǎng)程序并在線顯示測(cè)量數(shù)據(jù)圖

• 數(shù)據(jù)可導(dǎo)出為CSV、Excel或XML文件

• 支持GMS高精度氣體混合系統(tǒng)（僅限高級(jí)版）

• 用戶自編程培養(yǎng)程序（僅限高級(jí)版）

• 設(shè)定實(shí)驗(yàn)起始時(shí)間（僅限高級(jí)版）

• 電子郵件通知（僅限高級(jí)版）

• GMS150高精度氣體混合系統(tǒng)（選配）：可控制氣體流速和成分，標(biāo)配為控制氮?dú)?空氣和二氧化碳，氣源需用戶自備

• 恒濁控制模塊（選配）：帶有8個(gè)控制閥，可獨(dú)立控制8個(gè)培養(yǎng)管的濁度，由軟件自動(dòng)控制

• O₂/CO₂監(jiān)測(cè)系統(tǒng)（選配）：8通道續(xù)批式監(jiān)測(cè)藻類CO₂吸收或光合放氧通量：

• 氧氣分析測(cè)量：氧氣測(cè)量范圍0－100％，分辨率0.0001%，精確度優(yōu)于0.1％，溫度、壓力補(bǔ)償,數(shù)碼過濾（噪音）0-50秒可調(diào)，具兩行文字?jǐn)?shù)字LCD背光顯示屏，可同時(shí)顯示氧氣含量和氣壓

• 二氧化碳分析測(cè)量：雙波長非色散紅外技術(shù)，測(cè)量范圍0－5％或0－15％兩級(jí)選擇（雙程），分辨率優(yōu)于0.0001%或1ppm（可達(dá)0.1ppm），精確度1%，通過軟件溫度補(bǔ)償，具兩行文字?jǐn)?shù)字LCD背光顯示屏，可同時(shí)顯示CO2含量和氣壓，具數(shù)碼過濾（噪音）功能

• 氣體抽樣與氣路切換：具備隔膜泵、氣流控制針閥和精密流量計(jì)，氣路自動(dòng)定時(shí)切換功能

• 藻類熒光測(cè)量模塊（選配）：用于測(cè)量藻類熒光參數(shù)以反映藻類生理狀態(tài)及濃度，熒光測(cè)量程序包括Ft，QY，OJIP-test，NPQ、光響應(yīng)曲線等，可選配探頭式測(cè)量或試管式測(cè)量：

• 探頭式測(cè)量：具備光纖測(cè)量探頭，可插入培養(yǎng)液中原位測(cè)量藻類熒光參數(shù)

• 試管式測(cè)量：具備測(cè)量杯，可取樣精確測(cè)量藻類熒光參數(shù)及光密度值

• 通訊方式：USB

• 尺寸：71×33×21 cm

• 重量：13kg

• 供電：110-240V

應(yīng)用案例：

不同CO₂濃度下衣藻Chlamydomonas的生長曲線（Zhang，2014）

聚球藻Synechococcus野生型和△nblA的生長曲線（Yu，2015）

產(chǎn)地：捷克

參考文獻(xiàn)：

1.  Barera S, et al. 2021. Effect of lhcsr gene dosage on oxidative stress and light use efficiency by Chlamydomonas reinhardtii cultures. Journal of Biotechnology 328: 0168-1656.

2.  Pivato M, et al. 2021. Heterologous expression of cyanobacterial Orange Carotenoid Protein (OCP2) as a soluble carrier of ketocarotenoids in Chlamydomonas reinhardtii. Algal Research 55(16):102255.

3.  Gachelin M, et al. 2021. Enhancing PUFA-rich polar lipids in Tisochrysis lutea using adaptive laboratory evolution (ALE) with oscillating thermal stress. Applied Microbiology and Biotechnology 105: 301-312.

4.  Chen H, et al. 2021. A Novel Mode of Photoprotection Mediated by a Cysteine Residue in the Chlorophyll Protein IsiA. mBio 12(1).

5.  Cecchin M, et al. 2021. CO₂ supply modulates lipid remodelling, photosynthetic and respiratory activities in Chlorella species 18(2): 431842.

6.  Dixit RB, et al. 2021. Secretomics: A Possible Biochemical Foot Printing Tool in Developing Microalgal C*tion Strategies. doi: 10.21203/rs.3.rs-163118/v1

7.  Kareya MS, et al. 2020. Photosynthetic Carbon Partitioning and Metabolic Regulation in Response to Very-Low and High CO₂ in Microchloropsis gaditana NIES 2587. Frontiers in Plant Science 11: 981.

8.  Billey E, et al. 2021. Characterization of the Bubblegum acyl-CoA synthetase of Microchloropsis gaditana. Plant Physiology 185(3): 815-835.

9.  Vonshak A, et al. 2020. Photosynthetic characterization of two Nannochloropsis species and its relevance to outdoor c*tion. Journal of Applied Phycology 32(2):909-922.

10. Dienst D, et al. (2020). High density c*tion for efficient sesquiterpenoid biosynthesis in Synechocystis sp. PCC 6803. Scientific Reports 10(1): 5932.

11. Weiner I, et al. 2020. CSO -A sequence optimization software for engineering chloroplast expression in Chlamydomonas reinhardtii. Algal Research 46: 101788.

12. Akma C, et al. 2020. Two-phase method of c*ting Coelastrella species for increased production of lipids and carotenoids. Bioresource Technology Reports 9: 100366.

13. Cecchin M, et al. 2020. Improved lipid productivity in Nannochloropsis gaditana in nitrogen-replete conditions by selection of pale green mutants. Biotechnology for Biofuels 13(1): 78.

14. Alvarenga D, et al. 2020. AcnSP – A Novel Small Protein Regulator of Aconitase Activity in the Cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. Frontiers in Microbiology 11: 1445.

15. Zhang B, et al. 2020. The carbonate concentration mechanism of Pyropia yezoensis (Rhodophyta): evidence from transcriptomics and biochemical data. BMC Plant Biology 20(1): 424.

16. Nzayisenga, JC, et al. 2020. Effects of light intensity on growth and lipid production in microalgae grown in wastewater. Biotechnology for Biofuels 13(284): 1179-1184.

17. Cecchin M, et al. 2020. Improved lipid productivity in Nannochloropsis gaditana in nitrogen-replete conditions by selection of pale green mutants. Biotechnology for Biofuels 13(6): 312.

18. Flamholz AI, et al. 2020. Functional reconstitution of a bacterial CO₂ concentrating mechanism in Escherichia coli. eLife 9: e59882.

19. Gupta JK, et al. 2020. Overexpression of bicarbonate transporters in the marine cyanobacterium Synechococcus sp. PCC 7002 increases growth rate and glycogen accumulation. Biotechnology for Biofuels 13: 17.

20. Valev D, et al. 2020. Testing the Potential of Regulatory Sigma Factor Mutants for Wastewater Purification or Bioreactor Run in High Light. Current Microbiology 77(8) : 1590-1599.

21. Yao L, et al.. 2020. Pooled CRISPRi screening of the cyanobacterium Synechocystis sp PCC 6803 for enhanced industrial phenotypes. Nature Communications 11(1): 1666.

22. Shrameeta S, et al. 2020. Glycogen Metabolism Supports Photosynthesis Start through the Oxidative Pentose Phosphate Pathway in Cyanobacteria1. Plant Physiology 182(1):507-517.

23.  Alessandra B, et al. 2020. Photosynthesis Regulation in Response to Fluctuating Light in the Secondary Endosymbiont Alga Nannochloropsis gaditana. Plant & Cell Physiology 61(1): 41-52..