我們知道，在細(xì)胞培養(yǎng) 檢測實驗在實驗儀器、培養(yǎng)基等等工作上都要耗費不少的人力和體力。好在很久以前就有高人發(fā)明了細(xì)胞保存這個實驗步驟，將暫時多出來的細(xì)胞冰凍保存，以極大程度保存細(xì)胞活力。

一、細(xì)胞冷凍保存

1. 材料：

生長良好之培養(yǎng)細(xì)胞、新鮮培養(yǎng)基、DMSO (Sigma D-2650)、無菌塑料冷凍保存管(Nalgene　5000-0020)、0. 4%(w/v)trypan blue(GibcoBRL15250-061)、血球計數(shù)盤與蓋玻片、等速降溫機(jī)(KRYO10SeriesII)

2. 冷凍保存方法：

(1)傳統(tǒng)方法: 冷存管置于4 ℃10分鐘--->-20 ℃30分鐘--->-80 ℃ 16～18小時(或隔夜)--->液氮槽vaporphase長期儲存。

-20 ℃不可超過1小時，以防止胞內(nèi)冰晶過大，造成細(xì)胞大量死亡，亦可跳過此步驟直接放入-80 ℃冰箱中，惟存活率稍微降低一些。

(2)程序降溫：利用已設(shè)定程序的等速降溫機(jī)以-1～-3 ℃/分鐘之速度由室溫降至(-80 ℃以下)-120 ℃，再放在液氮槽vaporphase長期儲存。適用于懸浮型細(xì)胞與hybridoma之保存。

3. 步驟：

(1)冷凍前24-48小時更換半量或全量培養(yǎng)基，使細(xì)胞處于指數(shù)生長期。

(2)配制冷凍保存溶液(使用前配制)：另取一離心管，加入培養(yǎng)基、血清，逐滴加入二甲基亞砜 (DMSO)至20%濃度，即制成雙倍的凍存液，置于室溫下待用。

(3)離心收集培養(yǎng)之細(xì)胞，用加血清的培養(yǎng)基重懸起細(xì)胞，取少量細(xì)胞懸浮液(約0. 1 ml)計數(shù)細(xì)胞濃度及凍前存活率。

(4)取與細(xì)胞懸液等量的凍存液，緩慢逐滴加入細(xì)胞懸液，并晃動試管，制成細(xì)胞凍存懸液(DMSO后濃度為5～10%)，使細(xì)胞濃度為1～5×106cells/ ml，混合均勻，分裝于已標(biāo)示*之冷凍保存管中，1～2 ml/vial，并取少量細(xì)胞懸浮液作污染檢測。嚴(yán)密封口后，注明細(xì)胞名稱、代數(shù)、日期。然后進(jìn)行凍存。

4. 注意事項：

(1)欲冷凍保存之細(xì)胞應(yīng)在生長良好(logphase)且存活率高之狀態(tài)，約為80～90%致密度。冷凍前檢測細(xì)胞是否仍保有其*性質(zhì)，例如hybridoma應(yīng)在冷凍保存前一至二日測試是否有抗體之產(chǎn)生。

(2)細(xì)胞在液氮中可長期凍存無*，而不會影響細(xì)胞活力;在-70度可保存數(shù)月。

(3)注意冷凍保護(hù)劑之品質(zhì)。DMSO應(yīng)為試劑級等級，無菌且無色(以0. 22micron　FGLP　TeIflon過濾或是直接購買無菌產(chǎn)品，如Sigma D-2650)，以5～10 ml小體積分裝，4 ℃避光保存，勿作多次解凍。Glycerol亦應(yīng)為試劑級等級，以高壓蒸汽滅菌后避光保存。在開啟后一年內(nèi)使用，因長期儲存后對細(xì)胞會有毒性。本方法中先制備雙倍凍存液，可避免DMSO直接加入時釋放的熱量對細(xì)胞的損傷。緩慢逐滴加入細(xì)胞懸液是使細(xì)胞逐步適應(yīng)高滲，可降低細(xì)胞受損。DMSO可能引起部分白血病細(xì)胞株的分化，可換用10%甘油凍存。

(4)冷凍保存之細(xì)胞濃度：

①normal human fibroblast:1～3×106cells/ ml

②hybridoma:1～3×106cells/ ml，細(xì)胞濃度不要太高，某些hybridoma會因冷凍濃度太高而在解凍24小時后凋亡。

③adherent tumor lines:5～7×106，依細(xì)胞種類而異。Adenocarcinoma解凍后須較高之濃度，而HeLa只需1～3×106cells/ ml

④other suspensions:5～10×106cells/ ml，human lymphocyte須至少5×106cells/ ml。

(5)冷凍保護(hù)劑濃度為5或10%DMSO，若是不確定細(xì)胞之冷凍條件，在做冷凍保存之同時，亦應(yīng)作一個backup culture，以防止冷凍失敗。

(6)凍存可用10%～90%的血清，一般高濃度血清有助于維護(hù)細(xì)胞活力，此處介紹20%終濃度有利于細(xì)胞懸浮而少沉積(4度時)，復(fù)蘇存活率在80%～90%以上，對原代培養(yǎng)細(xì)胞，以90%血清凍存更為有效。

二、冷凍細(xì)胞活化

1. 冷凍細(xì)胞之活化原則為快速解凍，以避免冰晶重新結(jié)晶而對細(xì)胞造成傷害，導(dǎo)致細(xì)胞之死亡。

2. 細(xì)胞活化后，約需數(shù)日，或繼代一至二代，其細(xì)胞生長或特性表現(xiàn)才會恢復(fù)正常(例如產(chǎn)生單株抗體或是其它蛋白質(zhì))。

3. 材料

37 ℃恒溫水槽、新鮮培養(yǎng)基、無菌吸管/離心管/培養(yǎng)瓶、液氮或干冰容器

4. 步驟：

(1)操作人員應(yīng)戴防護(hù)面罩及手套，防止冷凍管可能爆裂之傷害。

(2)自液氮或干冰容器中取出冷凍管，檢查蓋子是否旋緊，由于熱脹冷縮過程，此時蓋子易松掉。

(3)將新鮮培養(yǎng)基置于37 ℃水槽中回溫，回溫后噴以70%酒精并擦拭之，移入無菌操作臺內(nèi)。

(4)取出冷凍管，立即放入37 ℃水槽中快速解凍，輕搖冷凍管使其在1分鐘內(nèi)全部融化，以70%酒精擦拭保存管外部，移入無菌操作臺內(nèi)。

(5)取出解凍之細(xì)胞懸浮液，緩緩加入有培養(yǎng)基之培養(yǎng)容器內(nèi)(稀釋比例為1:10～1:15)，混合均勻，放入CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。取0. 1 ml解凍細(xì)胞懸浮液作存活測試。

(6)解凍后是否立即去除冷凍保護(hù)劑(例如DMSO或glycerol)，依細(xì)胞種類而異，一般而言，大都不需要立即去除冷凍保護(hù)劑。惟若要立即去除，則將解凍之細(xì)胞懸浮液加入含有5-10 ml培養(yǎng)基之離心管內(nèi)，離心1000 rpm，5分鐘，移去上清液，加入新鮮培養(yǎng)基，混合均勻，放入CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

(7)若不需立即去除冷凍保存劑，則在解凍培養(yǎng)后隔日更換培養(yǎng)基。

三、細(xì)胞計數(shù)與存活測試

1. 原理：

(1)計算細(xì)胞數(shù)目可用血球計數(shù)盤或是Coultercounter粒子計數(shù)器自動計數(shù)。

(2)血球計數(shù)盤一般有二個chambers，每個chamber中細(xì)刻9個1 mm2大正方形，其中4個角落之正方形再細(xì)刻16個小格，深度均為0. 1 mm。當(dāng)chamber上方蓋上蓋玻片后，每個大正方形之體積為1 mm2×0. 1 mm=1. 0x10-4 ml。使用時，計數(shù)每個大正方形內(nèi)之細(xì)胞數(shù)目，乘以稀釋倍數(shù)，再乘以104，即為每 ml中之細(xì)胞數(shù)目。

(3)存活測試之步驟為dyeexclusion，利用染料會滲入死細(xì)胞中而呈色，而活細(xì)胞因細(xì)胞膜完整，染料無法滲入而不會呈色。一般使用藍(lán)色之trypan blue染料，如果細(xì)胞不易吸收trypan blue，則用紅色之Erythrosin bluish。計算細(xì)胞活率：活細(xì)胞數(shù)/(活細(xì)胞數(shù)+死細(xì)胞數(shù))×100%。計數(shù)應(yīng)在臺盼蘭染色后數(shù)分鐘內(nèi)完成，隨時間延長，部分活細(xì)胞也開始攝取染料;因為臺盼蘭對蛋白質(zhì)有很強(qiáng)的親和力，用不含血清的稀釋液，可以使染色計數(shù)更為準(zhǔn)確。

2. 材料：

0. 4%w/v trypan blue(GibcoBRL15250-061);Erythosin bluish stain;取0. 1gram Erythrosin bluish(SigmaE-9259)及0. 05gram preservative methyl paraben(SigmaH-3647)溶于100 mlCa++/Mg++freesaline;血球計數(shù)盤及蓋玻片(Hemocytometerandcoverslip);計數(shù)器(counter);低倍倒立顯微鏡;粒子計數(shù)器(Coultercounter,CoulterElectronics)。白細(xì)胞稀釋液(4%乙酸溶液)。

3. 步驟：

(1)取50 μl細(xì)胞懸浮液與50 μl trypan blue(orErythrosinbluish)等體積混合均勻于1. 5 ml小離心管中。

(2)取少許混合液(約15 μl)自血球計數(shù)盤chamber上方凹槽加入，蓋上蓋玻片，于100倍倒立顯微鏡下觀察，活細(xì)胞不染色，死細(xì)胞則為藍(lán)色(或紅色-Erythrosin bluish)。

(3)計數(shù)四個大方格之細(xì)胞總數(shù)，再除4，乘以稀釋倍數(shù)(至少乘以2，因與trypanblue等體積混合)，后乘以104，即為每 ml中細(xì)胞懸浮液之細(xì)胞數(shù)。若細(xì)胞位于線上，只計上線與右線之細(xì)胞(或計下線與左線之細(xì)胞)。

注：4大格細(xì)胞總數(shù)×稀釋倍數(shù)×104/4=細(xì)胞數(shù)/ ml;每一大格的體積=0. 1 cm×0. 1 cm×0. 01 cm=10-4 ml

計數(shù)板計數(shù)時，適濃度為5～10×105細(xì)胞/ ml，此范圍外計數(shù)誤差偏大。高濃度細(xì)胞懸液，可取出部分作稀釋或連續(xù)稀釋后計數(shù)。

4. 范例：

T75 monolayer culture制成10 ml細(xì)胞懸浮液，取0. 1 ml溶液與0. 1 ml trypan blue混合均勻于試管中，取少許混合液加入血球計數(shù)盤，計數(shù)四大方格內(nèi)之細(xì)胞數(shù)目。

活細(xì)胞數(shù)/方格：55，62，49，59;死細(xì)胞數(shù)/方格：5，3，4，6;細(xì)胞總數(shù)=243

平均細(xì)胞數(shù)/方格=60. 75;稀釋倍數(shù)=2;

細(xì)胞數(shù)/ ml：60. 75×104×2(稀釋倍數(shù))=1. 22×106;

細(xì)胞數(shù)/flask(10 ml)：1. 22×106×10 ml=12. 2×106

其實理論上講處于細(xì)胞增殖期之前的細(xì)胞都可用于凍存，不過如果想要更好的效果，還得取對數(shù)生長期的細(xì)胞，并注意做好凍存前的換液工作。溫馨提示，從凍存管將細(xì)胞放入或取出時，都好做好保護(hù)工作，以免受凍。