一、實驗原理
細胞培養(yǎng)可分為原代培養(yǎng)和傳代培養(yǎng)。直接從體內(nèi)獲取的組織細胞進行培養(yǎng)為原代培養(yǎng);當原代培養(yǎng)的細胞增殖達到一定密度后,則需要做再培養(yǎng), 即將培養(yǎng)的細胞分散后,從一個容器以1:2或其他比率轉(zhuǎn)移到另一個或幾個容器中擴大培養(yǎng),為傳代培養(yǎng),傳代培養(yǎng)的累積次數(shù)就是細胞的代數(shù)。
細胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,實驗證明這樣可以zui大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或DMSO作保護劑,這兩種物質(zhì)能提高 細胞膜對水的通透性,加上緩慢冷凍可使細胞內(nèi)的水分滲出細胞外,減少細胞內(nèi)冰晶的形成,從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復(fù)蘇細胞應(yīng)采用快速融化的方 法,這樣可以保證細胞外結(jié)晶在很短的時間內(nèi)即融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細胞造成損傷。
二、實驗方法
材料:
小鼠,生理鹽水,100ml滅菌燒杯,15ml離心管,培養(yǎng)皿,滴管,無菌鑷子、剪刀,篩網(wǎng),泡沫板,大頭針,酒精燈,培養(yǎng)瓶,培養(yǎng) 液,PBS,0.25%胰酶,超凈工作臺、二氧化碳培養(yǎng)箱、倒置顯微鏡,顯微鏡,計數(shù)板,離心機,恒溫水浴箱,冰箱(4℃、-20℃、-70℃),液氮 罐,凍存管,凍存液,廢液缸等。
方法:
(1)原代培養(yǎng):
1.取出小鼠后瀝干酒精,放入超凈臺內(nèi),固定在泡沫板上。
2.用鑷子提起皮膚,用解剖剪剪開皮膚一個橫切口,將皮膚向上撕開,然后剪開肌肉等,暴露出腹腔,在左側(cè)找到脾臟,用彎頭眼科鑷取出脾臟,置于無菌培養(yǎng)皿中。
3.用生理鹽水將取出的脾臟清洗多次,并剔除多余無用的組織。
4.將篩網(wǎng)置于平皿中,脾臟置于篩網(wǎng)上,用彎頭鑷鑷住,輕輕在篩網(wǎng)上進行碾磨,同時不停滴加不含血清的培養(yǎng)液沖洗。
5.將碾磨好的細胞懸液吸入至離心管中,離心(1000rpm,5min),吸去上清(去除血液等)。
6.加入10ml培養(yǎng)液,吹打混勻,取樣計數(shù)。
7.將稀釋好的細胞懸液分裝于培養(yǎng)瓶中,輕輕搖晃混勻,在培養(yǎng)瓶上。
面做好標志,注明細胞、組別及日期。然后將培養(yǎng)瓶置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
(2)傳代培養(yǎng):
1.倒置顯微鏡下觀察細胞形態(tài),確定細胞是否需要傳代。
2.培養(yǎng)液瓶打開后,過酒精燈火焰,置酒精燈火焰周圍。
3.拿出直頭滴管,套上橡皮吸頭,過火,放入培養(yǎng)液瓶中。
4.打開培養(yǎng)瓶,瓶口過火,將培養(yǎng)瓶內(nèi)的培養(yǎng)液輕輕倒入廢液缸,用2-3mLPBS洗去殘留的舊培養(yǎng)基。
5.培養(yǎng)瓶加入0.25%胰酶,用量以薄薄蓋滿一層為宜,37℃消化,倒置顯微鏡下觀察到細胞收回突起變圓時立即翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,使細胞脫離胰酶,然后將胰酶倒掉,加入少量的含血清的新鮮培養(yǎng)基。
6.取彎頭滴管反復(fù)吹打細胞使其脫壁并分散,再根據(jù)分傳瓶數(shù)補加一定量的含血清的新鮮培養(yǎng)基,制成細胞懸液,然后分裝到新培養(yǎng)瓶中。蓋上瓶蓋,適度擰緊后再稍回轉(zhuǎn),以利于CO2氣體的進入,將培養(yǎng)瓶放回CO2培養(yǎng)箱。
7.對半貼壁培養(yǎng)細胞,不需胰酶,直接吹打,加入新鮮培養(yǎng)基,然后分裝到各瓶中。
(3)凍存:
1.吸取傳代后的細胞懸液,離心,去除培養(yǎng)液,加入凍存液,分裝凍存管(凍存管內(nèi)細胞數(shù)目一般為(5~10)×106個/ml,2ml凍存管中一般放1~1.5ml細胞)。
2.按步凍存
o冷凍保存方法一:標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5~-10℃/min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。
o冷凍保存方法二:冷凍管置于已設(shè)定程序之程序降溫機中每分鐘降1~3℃至-80℃以下,再放入液氮長期保存。
(4)復(fù)蘇:
1.取出冷凍管,立即放入37℃水浴箱中快速解凍,輕搖冷凍管使其在1分鐘內(nèi)全部融化,移入無菌操作臺內(nèi)。
2.打開凍存管,將細胞懸液吸到離心管中。
3.1000rpm離心10分鐘,棄去上清液。
4.加適當培養(yǎng)液后將細胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中,37℃培養(yǎng),第二天觀察生長情況。
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