目錄:柏萊源(天津)生物科技有限公司>>生物試劑>>培養(yǎng)基>> 85850STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養(yǎng)基
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 500 mL |
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貨號 | 85850 | 主要用途 | 用于細胞培養(yǎng) |
mTeSR™1(85850)——超多文獻支持的“金標準"
STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養(yǎng)基是一款專為培養(yǎng)人類多能干細胞(hPSC)設計的無血清、無飼養(yǎng)層細胞培養(yǎng)基。其配方和經(jīng)過優(yōu)化的成分組合,確保了hPSC的長期、穩(wěn)定且高效的增殖,同時保持了細胞的原始特性和分化潛能。
在mTeSR™1中維持培養(yǎng)的人ES和iPS細胞:
•表型一致,核型正常
• 高表達多種未分化多能干細胞的基因(例如OCT4,SSEA-3,SSEA-4, TRA-1-60, TRA-1-81和NANOG)
• 可形成包含三個胚層細胞的畸胎瘤
• 可定向分化成為所有三個胚層的成熟細胞類型(例如,中胚層,內胚層和外胚層)
• 從飼養(yǎng)層依賴的培養(yǎng)體系轉換時不需要適應期(例如沒有細胞產(chǎn)率低的時期)
• 兼容生物反應器和懸浮培養(yǎng)
實驗數(shù)據(jù):
未分化的人ES細胞(圖1A和圖2A)和iPS細胞(圖3A和圖4A)在mTeSR™1中培養(yǎng),形成緊密的多細胞集落,具有清晰的邊界。細胞間緊密的堆積起來,具有高核質比,且核仁顯著。健康的集落會無縫的融合起來,在中心有多層細胞,在相襯顯微鏡下觀察, 成緊密的細胞簇。mTeSR™1中培養(yǎng)的集落在Vitronectin XF™上生長時更緊密且更圓(圖1和圖3),而使用Corning® Matrigel®生長的集落則較為分散且形狀不規(guī)則。 在這兩種基質上,自發(fā)性分化的特征表現(xiàn)為失去集落邊界的完整性,一個集落內有不規(guī)則的細胞形態(tài)區(qū)域,或者出現(xiàn)其他的細胞類型等(圖1B,圖2B,圖3B)。
圖1. 在 Vitronectin XF™上和mTeSR™1中培養(yǎng)的人ES細胞的形態(tài)特征。(A)最佳傳代時的未分化的人ES細胞(H1和H9) 。(B) 兩個未分化的H1集落中間出現(xiàn)自發(fā)性分化的區(qū)域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率:20X,40X和400X。
圖2. 在Corning® Matrigel®和mTeSR™1中培養(yǎng)的人ES的形態(tài)特征。(A) 最佳傳代時期未分化的人ES細胞(H1和H9)。(B)在一個未分化的H1集落旁邊自發(fā)性分化的區(qū)域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率: 20X, 40X和400X。
圖3. 在Vitronectin XF™和mTeSR™1中培養(yǎng)的人iPS細胞的形態(tài)特征。(A) 最佳傳代時期未分化的人iPS 細胞細胞(WLS-4D1和WLS-1C)。(B) 在兩個未分化WLS-1C集落中間出現(xiàn)的自發(fā)性分化區(qū)域 (橙色圈中)。 圖像使用了三種放大倍率:20X, 40X和400X。
圖4. 在Corning® Matrigel®和mTeSR™1中培養(yǎng)的人iPS細胞的形態(tài)特征。(A) 最佳傳代時期未分化的人iPS細胞(WLS-4D1和WLS-1C)。(B) 未分化WLS-1C集落邊界旁的自發(fā)性分化區(qū)域(橙色圈中)。圖像使用了三種放大倍率:20X,40X和400X。
產(chǎn)品特征:
1. 無血清配方:不含動物源成分,降低了病毒和微生物污染的風險,提高了實驗的穩(wěn)定性和可靠性。
2. 無飼養(yǎng)層細胞:無需額外的飼養(yǎng)層細胞,簡化了實驗操作,降低了成本。
3. 高效增殖:mTeSR™1培養(yǎng)基能夠有效促進hPSC的增殖,同時保持細胞的原始特性和分化潛能。
4. 長期穩(wěn)定性:經(jīng)過長時間的實驗驗證,mTeSR™1培養(yǎng)基在多次傳代后仍能維持hPSC的穩(wěn)定性和活性。
5. 易于使用:方便的包裝和清晰的使用說明,使得該培養(yǎng)基在實驗室中易于使用和管理。
應用領域:
STEMCELL mTeSR™1 人ES/iPS細胞培養(yǎng)基廣泛應用于人類多能干細胞的基礎研究、藥物篩選、再生醫(yī)學和細胞治療等領域。它能夠幫助研究人員更好地理解hPSC的生物學特性,推動相關領域的科學研究和技術發(fā)展。
相關文獻:
1. Ludwig TE et al. (2006) Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions. Nat Biotechnol 24(2): 185–7.
2. Ludwig TE et al. (2006) Feeder-independent culture of human embryonic stem cells. Nat Methods 3(8): 637–46.
3. Yu J et al. (2007) Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science 318(5858): 1917–20.
4. Masaki H et al. (2007) Heterogeneity of pluripotent marker gene expression in colonies generated in human iPS cell induction culture. Stem Cell Res 1(2): 105–15.
5. Sun N et al. (2009) Feeder-free derivation of induced pluripotent stem cells from adult human adipose stem cells. Proc Natl Acad Sci USA 106(37): 15720–5
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