多重熒光免疫組化技術(Multiplex immunohistochemical,mIHC) 也稱作酪氨酸信號放大 (Tyramide dignal amplification,TSA) 技術,是一類利用辣根過氧化酶(Horseradish Peroxidase, HRP) 對靶蛋白或核酸進行高密度原位標記的酶學檢測方法。
該方法基于酪胺信號放大的多重順次免疫染色技術,允許同時檢測單個細胞或組織樣本上的多個目標靶點,全面研究細胞組成、細胞功能和細胞間相互作用。
原理:帶有染料標記的底物酪胺 (T) 分子在過氧化氫氧化環(huán)境下,被抗體或探針固定的 HRP 轉化為具有短暫活性的中間狀態(tài) (T*),然后被激活的中間態(tài)分子 (T*) 迅速與相接蛋白分子的富含電子區(qū)域 (酪氨酸殘基) 進行穩(wěn)定的共價結合,未被標記的酪胺分子將被洗脫,借此實現(xiàn)對抗原的特異性染色。由于相接的蛋白 (包括 HRP,抗體,目標抗原) 都含有大量的酪氨酸結合位點,所以目標抗原處會富集大量標記分子,使信號被有效放大 (圖 2)。
■ IHC 與 mIHC
2. 常規(guī)免疫組化受傳統(tǒng)染色成像的限制,靶標少于 3 個,無法完整分析組分信息。而多重熒光免疫組化可實現(xiàn)多因子共定位,可以獲取更多的生物信息,且樣本需求量較少。
圖 4. 癌組織單色 IHC(上)和多色譜 mIHC(下)驗證[3]
■ mIHC 與 IF
那么問題來了,mIHC 與 IF 又有什么區(qū)別呢?既然最后的成像都是熒光圖像,那按照 IF 實驗就行哇,為什么要去做 mIHC 呢???
:其實,mIHC 作為一種新型的免疫化學技術,其價值自然會優(yōu)于傳統(tǒng)的 IF 實驗,并且二者在原理及操作步驟上均有差異。
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圖 3. mIHC(左)和常規(guī)三色熒光檢測示意圖(右)
■ 應用一:腫瘤機制探究
Gang Wei 等人收集了透明細胞腎細胞癌 (ccRCC) 患者的腎周脂肪 (Perinephric adipose tissue, PAT) 和皮下白色脂肪 ( White adipose tissue,WAT) 組織樣本,發(fā)現(xiàn)腫瘤鄰近脂肪細胞的解偶聯(lián)蛋白 1 (Uncoupling protein 1, UCP1) 表達高于遠端脂肪細胞(WAT 褐變的典型特征之一是 UCP1 的表達上調)。
此外,腫瘤細胞的 qRT-PCR、mIHC 檢測和免疫印跡均表明,在聯(lián)合注射 BAC-shPgc1a或 BAC-shUcp1 相關的腫瘤中,脂肪細胞促進的 UCP1 水平上調被抑制(圖 4)。
進一步的研究發(fā)現(xiàn),ccRCC 細胞分泌甲狀旁腺激素相關蛋白 PTHrP 以通過 PKA 激活促進 PAT 褐變,而 PAT 介導的產熱導致過量乳酸的釋放以增強 ccRCC 的生長、侵襲和轉移色[2]。
圖 4. UCP1 水平變化的檢測[4]
mIHC (A), qRT-PCR (BG) and Immunoblotting (C) 檢測 UCP1 水平。空白對照組:786-O; 陰性對照組:786-O+BAC-Scramble;敲低 Pgc1a 實驗組:786-O+ BAC-shPgc1a;敲低Ucp1實驗組:786-O+ BAC-shUcp1。
■ 應用二:免疫抑制性腫瘤微環(huán)境鑒定
貨號 | 產品名稱 | Ex/Em (nm) |
HY-D1838 | Vari Fluor 350 TSA(200×) | 347/448 |
HY-D1837 | Vari Fluor 488 TSA(200×) | 490/515 |
HY-D1832 | Vari Fluor 532 TSA(200×) | 527/558 |
HY-D1836 | Vari Fluor 555 TSA(200×) | 555/565 |
HY-D1835 | Vari Fluor 594 TSA(200×) | 590/617 |
HY-D1834 | Vari Fluor 640 TSA(200×) | 617/639 |
HY-D1831 | Vari Fluor 620 TSA(200×) | 617/639 |
HY-D1833 | Vari Fluor 680 TSA(200×) | 617/639 |
HY-D1839 | Biotin TSA(200×) | / |
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參考文獻
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