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LabpO Blunt快速連接試劑盒(帶T4 ligase)
  • LabpO Blunt快速連接試劑盒(帶T4 ligase)

貨物所在地:北京北京市

更新時(shí)間:2024-10-05 21:00:07

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零背景平末端快速連接試劑盒是一種先進(jìn)的自sha基因陽性選擇克隆系統(tǒng),可以高效克隆平末端PCR產(chǎn)物和任何具有平末端的DNA片段。該試劑盒對(duì)磷酸化或非磷酸化的dna片段都有效.陽性選擇載體和插入片段連接僅需5分鐘即可獲得超過90%的陽性重組克隆。由具有校正活性的聚合酶(如: Pfu polymerase)擴(kuò)增的平末端PCR產(chǎn)物可直接連入克隆載體。連接產(chǎn)物可直接轉(zhuǎn)化常用的大腸桿菌菌株。

LabpO Blunt快速連接試劑盒(含T4連接酶


產(chǎn)品貨號(hào)P0101

儲(chǔ)存溫度:-20℃儲(chǔ)存,6個(gè)月內(nèi)不影響使用效果。

試劑盒組成

20次

40次

pZERO-Blunt Vector(40ng/ul)

20ul

40ul

900bp Control(40ng/ul)

5ul

5ul

2×Quick Ligation Buffer

100ul

200ul

T4 DNA ligase, 5U/ul

20ul

40ul

Forward Sequencing Primer (10µM)

50ul

100ul

Reverse Sequencing Primer (10µM)

50ul

100ul


產(chǎn)品介紹

零背景平末端快速連接試劑盒是一種先進(jìn)的自sha基因陽性選擇克隆系統(tǒng),可以高效克隆平末端 PCR 產(chǎn)物和任何具有平末端的DNA片段。該試劑盒對(duì)磷酸化或非磷酸化的DNA片段都有效。陽性選擇載體和插入片段連接僅需5分鐘即可獲得超過95%的陽性重組克隆。由具有校正活性的聚合酶(如:Pfu polymerase)擴(kuò)增的平末端PCR產(chǎn)物可直接連入克隆載體。連接產(chǎn)物可直接轉(zhuǎn)化常用的大腸桿菌菌株。

試劑盒提供一個(gè)新穎的自sha基因陽性選擇克隆載體pZERO-Blunt。該載體含有致死的自sha基因(內(nèi)含多克隆位點(diǎn)),當(dāng)載體與片段連接成功,自sha基因無法正確表達(dá),包含重組子的細(xì)胞可以正常生長(zhǎng);當(dāng)載體與片段連接不成功,載體自連后自sha基因正確表達(dá),包含自連空載體的細(xì)胞無法存活,即零背景。這種陽性篩選策略無需藍(lán)白斑篩選,極大地加速了克隆篩選進(jìn)程。

為方便酶切作圖和插入片段基因操作,pZERO-Blunt克隆載體的多克隆位點(diǎn)兩側(cè)各包含一個(gè)BglII識(shí)別序列。此外,該載體含有T7啟動(dòng)子,可用于體內(nèi)或體外轉(zhuǎn)錄、插入片段測(cè)序等研究。

操作步驟

1.連接反應(yīng)的準(zhǔn)備:

平末端PCR產(chǎn)物或者酶切后平末端片段可以通過瓊脂糖凝膠電泳分離回收(使用長(zhǎng)波紫外光下切膠或者可見光透射切膠避免DNA損傷造成連接失?。Ec載體的摩爾比是3:1。

2.連接反應(yīng):

1) 在一個(gè)標(biāo)準(zhǔn)的10ul連接反應(yīng)體系中,加入1ul 40ng pZERO-Blunt載體、X ul PCR產(chǎn)物(在通常狀況下,沒有必要對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行精確定量,一般PCR產(chǎn)物與載體的摩爾比優(yōu)化至1:1~10:1就可以得到良好結(jié)果,推薦3:1,見附錄)、5ul 2×Quick ligation Buffer 和0.9ul的T4 DNA Ligase,其余用滅菌水補(bǔ)足。

反應(yīng)按以下體系進(jìn)行:

2 × Quick Ligation Buffer

5ul

pZERO-Blunt載體

1ul

純化后的PCR 產(chǎn)物/或者 1ul 900bp control

Xul

無菌水

Yul

T4 DNA Ligase (5 Weiss Units/ul)

0.9ul

總體積

10ul

一般最后加入T4 DNA Ligase。

2)22℃連接5-10分鐘(一般可在PCR儀器完成)。

通常推薦 22℃連接5-10分鐘 ,>3kb 長(zhǎng)片段連接可以延長(zhǎng)至30分鐘。不推薦超過30分鐘,超過可能降低轉(zhuǎn)化子數(shù)量。

3)冰上冷卻,然后轉(zhuǎn)化或貯存于-20℃。

3.轉(zhuǎn)化:

1)100ul感受態(tài)細(xì)胞,置于冰上,*解凍后輕撣幾次將細(xì)胞均勻懸浮。

2)加入4-5ul連接液(最多可全部加入,只要連接液體積不超過感受態(tài)細(xì)胞體積的1/10),輕輕混勻。冰上放置30分鐘。

3)42℃水浴熱激90秒。冰上放置2~3 分鐘。

4)加500ulLB 或者SOC 培養(yǎng)基(不含抗生素),37℃ 150rpm 振蕩培養(yǎng)60分鐘。

5)將200ul細(xì)菌涂布在氨芐青霉素(100µg/ml)平板上。

涂布細(xì)菌的用量依連接的效率及感受態(tài)細(xì)胞的感受率而進(jìn)行適當(dāng)?shù)恼{(diào)整,如果預(yù)計(jì)的克隆較少,可通過離心(4,000rpm,2分鐘)后吸除部分培養(yǎng)液,留下適量的培養(yǎng)基懸浮菌體后取全部或者適量涂布于一個(gè)平板中(涂布剩余的菌液可以放4度保存,第2天如果轉(zhuǎn)化菌落數(shù)量少,可將剩余菌液全部涂一個(gè)新培養(yǎng)板)。

6)平板在37℃下正向放置 1小時(shí)以吸收過多的液體,然后倒置培養(yǎng)過夜。

4.轉(zhuǎn)化子的篩選鑒定:

1) 常規(guī)檢測(cè):將得到的菌落接種1-5ml LB(含有終濃度為100µg/ml的氨芐青霉素)培養(yǎng)基,37℃搖床振蕩培養(yǎng)過夜,保存菌種后提取質(zhì)粒,應(yīng)用PCR或酶切方法鑒定插入片段是否正確。

2) 快速檢測(cè):挑取菌落直接進(jìn)行PCR檢測(cè)(可參見分子克隆第3版本)。

3) 測(cè)序鑒定:使用試劑盒自帶引物或者T7啟動(dòng)子引物測(cè)序來確定是否含有目的克隆。

試劑盒自帶測(cè)序引物(暨菌落PCR引物):

forward sequencing primer, 23-mer

5’-CGACTCACTATAGGGAGAGCGGC-3’

reverse sequencing primer, 24-mer

5’-AAGAACATCGATTTTCCATGGCAG-3’


附錄:

如何計(jì)算連接反應(yīng)中需要的PCR 產(chǎn)物的量 ?

一般PCR產(chǎn)物與載體的摩爾比優(yōu)化至1:1~10:1(推薦3:1)就可以得到良好結(jié)果,可采用以下公式:

[加入載體的量(ng)×插入片段大?。╧b)÷載體大?。╧b)]×插入片段和載體的摩爾比=插入片段的量(ng) 例如:插入片段和載體連接的摩爾比例為3:1,如連接反應(yīng)中加入載體40ng,插入片段大小為500bp,這時(shí)應(yīng)加入插入片段的量為[40ng載體×0.5kb插入片段÷2.974kb載體]×3/1=20.2ng。

pZERO-Blunt 載體圖譜:

pZERO-Blunt 載體克隆位點(diǎn)序列:



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