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當(dāng)前位置:北京蘭博利德商貿(mào)有限公司>>蛋白研究>>蛋白純化>> M1050-100mlMBP標(biāo)簽親和填料 (麥芽糖結(jié)合蛋白)
M1050-100ml
代理商
北京市
100ml 4800元 999ml可售
更新時間:2023-11-26 21:03:09瀏覽次數(shù):739次
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MBP 標(biāo)簽親和填料 (麥芽糖結(jié)合蛋白)
產(chǎn)品貨號:M1050
儲存條件:2-8 °C
產(chǎn)品簡介
Dextrin Beads 6FF 是一種純化帶有麥芽糖結(jié)合蛋白(MBP)標(biāo)簽蛋白的親和層析介質(zhì),具體性能見表1。MBP可促進連接蛋白的正確折疊,增加在細菌中過量表達的融合蛋白的溶解性,尤其是真核蛋白。Dextrin Beads 6FF可以一步純化MBP融合蛋白,結(jié)合的融合蛋白可以用10 mM麥芽糖進行溫和洗脫,保護了標(biāo)簽蛋白的活性。如果要去除MBP融合部分可用位點特異性蛋白酶切除。
表 1 Dextrin Beads 6FF 產(chǎn)品性能
項目 | 性能 |
基質(zhì) | 高度交聯(lián)的6%瓊脂糖微球 |
配體 | 糊精 |
載量 | >10 mg MBP蛋白(80 kDa) /ml 介質(zhì) |
微球粒徑 | 45-165 pm |
最大壓力 | 0.3 MPa, 3 bar |
pH穩(wěn)定范圍 | 3-12 |
儲存緩沖液 | 含20%乙醇的1xPBS |
儲存溫度 | 2-8 °C |
純化流程
1. 緩沖液的準備
所用水和緩沖液在使用之前建議用0.22 um或0.45 um濾膜過濾。
平衡/洗雜液: 20 mM Tris-HCI,200 mM NaCl,1 mM EDTA,pH7.4
洗脫液: 20 mM Tris-HCl,1 mM EDTA,10 mM麥芽糖,pH7.4
注意: 平衡液和洗脫液中可加入1 mM DTT或10 mM β-疏基乙醇
2. 樣品準備
樣品在上樣前建議離心或用0.22um或0.45um濾膜過濾,減少雜質(zhì),提高蛋白純化效率和防止堵塞柱子。
3 Dextrin Beads 6FF裝填
3.1重力柱的裝填
1)取合適規(guī)格的重力層析柱,裝入下墊片,加入適量純水潤洗柱管和墊片,關(guān)閉下出口。
2)將Dextrin Beads 6FF混合均勻,用槍頭吸取適量漿液加入至重力柱中(介質(zhì)實際體積占懸液的一半),打開下出口流干保護液。
3)加入適量純水沖洗介質(zhì),待柱管中液體重力流干后,關(guān)閉下出口。
4)裝入潤洗后的上墊片,確保墊片與填料之前沒有空隙,且保持水平。
5)裝填好的重力柱可以直接加入平衡液進行平衡,暫不使用時則加入保護液,2-8℃保存。
3.2中壓層析柱的裝填
Dextrin Beads 6FF被廣泛應(yīng)用于工業(yè)純化,因此,涉及到各種中壓色譜層析柱的填裝,下面介紹填裝層析柱的方法。裝柱前根據(jù)層析柱直徑計算柱子底面積,根據(jù)所需裝柱高度計算所需介質(zhì)體積,公式如下:
V = 1.15πr2h (V:所需介質(zhì)體積ml;1.15:壓縮系數(shù);r:柱管半徑cm;h:裝填高度cm)
注意:所取懸液體積應(yīng)為介質(zhì)體積的兩倍,因為介質(zhì)體積只占懸液總體積的一半,另一半為保護液。
1) 用去離子水沖洗層析柱底篩板與接頭,確保柱底篩板上無氣泡,關(guān)閉柱底出口,并在柱底部留1-2 cm的去離子水。
2) 將介質(zhì)懸浮起來,小心的將漿液連續(xù)地倒入層析柱中。用玻璃棒沿著柱壁倒入漿液可減少氣泡的產(chǎn)生。
3) 如果使用儲液器,應(yīng)立即在層析柱和儲液器中加滿水,將進樣分配器放置于漿液表面,連接至泵上,避免在分配器或進樣管中產(chǎn)生氣泡。
4) 打開層析柱底部出口,開啟泵,使其在設(shè)定的流速下進行。最初應(yīng)讓緩沖液緩慢流過層析柱,然后緩慢增加至最終流速,這樣可避免液壓對所形成柱床的沖擊,也可以避免柱床形成的不均勻。如果達不到推薦的壓力或流速,可以用所使用泵的最大流速,這樣也可以得到一個很好的裝填效果。(注意:在隨后的色譜程序中,不要超過最大裝柱流速的75%)當(dāng)柱床高度穩(wěn)定后,在最后的裝柱流速下至少再上3倍柱床體積的去離子水。標(biāo)上柱床高度。
5) 關(guān)閉泵,關(guān)閉層析柱出口。
6) 如果使用儲液器,去除儲液器,將分配器置于層析柱中。
7) 將分配器推向柱子至標(biāo)記的柱床高度處。允許裝柱液進入分配器,鎖緊分配器接頭。
8) 將裝填好的層析柱連接至泵或色譜系統(tǒng)中,開始平衡。如果需要可以重新調(diào)整分配器。
4. 樣品純化流程
4.1孵育法純化
1) 根據(jù)純化樣品量,取適量Dextrin Beads 6FF加入離心管中,1000rpm離心1 min,吸棄上清;也可加入重力柱中,流干保護液。
2) 向離心管中加入5倍介質(zhì)體積的平衡液清洗介質(zhì),1000rpm離心1 min,吸棄上清;如使用重力柱,則直接在重力柱中清洗,直接重力流干平衡液;重復(fù)兩次以上。
3) 加入樣品,封閉離心管或重力柱管,4°C振蕩孵育2-4h或者37°C孵育30 min-2h。
4) 孵育結(jié)束后,1000 rpm離心1 min,吸棄上清,或過濾收集介質(zhì),上清保留作為流穿,用于電泳鑒定。
5) 用5倍介質(zhì)體積的洗雜液清洗介質(zhì),1000 rpm離心1 min或重力柱管過濾,去除上清(注意不要吸到介質(zhì)),重復(fù)3-5次,中間建議更換新離心管。
6) 加入3-5倍柱體積的洗脫液進行洗脫,室溫孵育10-15 min, 1000 rpm離心1 min或重力柱管收集洗脫液,可重復(fù)2-3次。
4.2重力柱法純化
1) 將裝填好的Dextrin Beads 6FF重力柱用5倍柱體積平衡液進行平衡,使填料處于與目的蛋白相同的緩沖液體系下,重復(fù)2-3次。
2) 將樣品加到平衡好的重力柱中,樣品保留時間至少2 min,保證樣品和介質(zhì)充分接觸,收集流出液,可
以反復(fù)上樣增加結(jié)合效率。
3) 用10-15倍柱體積的洗雜液進行洗雜,去除非特異性吸附的雜蛋白,收集洗雜液。
4) 使用5-10倍柱體積的洗脫液洗脫,分段收集,每一個柱體積收集一管,分別檢測,既可以保證所有結(jié)合的目的蛋白被洗脫,又可以得 到高純度和高濃度的蛋白。
4.3中壓層析柱法純化
Dextrin Beads 6FF裝填好后,可以用各種常規(guī)的中低壓色譜系統(tǒng)。
1) 將泵管道中注滿去離子水。去掉上塞子,將層析柱連接至色譜系統(tǒng)中,打開下出口,將預(yù)裝柱接到色譜系統(tǒng)中,并旋緊。
2) 用3-5倍柱體積的去離子水沖洗出儲存緩沖液。
3) 使用至少5倍柱床體積的平衡液平衡色譜柱。
4) 利用泵或樣品環(huán)上樣。
注:樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少,也會導(dǎo)致層析柱很大的反壓。上樣量不要超過柱子的結(jié)合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,使得進樣器更難使用。
5) 用洗雜液沖洗柱子,直到紫外吸收達到一個穩(wěn)定的基線(一般至少10-15個柱體積)。
6) 使用5-10倍柱體積的洗脫液洗脫,收集洗脫液,即目的蛋白組分。
上述步驟洗脫結(jié)束后,用平衡液沖洗3倍柱體積,然后用純水沖洗5倍柱體積,再用保護液沖洗2個柱體積,然后將介質(zhì)置于2-8°C保存。
5. SDS-PAGE 檢測
將使用純化產(chǎn)品得到的樣品(包括流出組分、洗雜組分和洗脫組分)以及原始樣品使用SDS-PAGE檢測純化效果。
6. 填料清洗
Dextrin Beads 6FF純化產(chǎn)品可以重復(fù)使用而無需再生,但隨著非特異性結(jié)合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和結(jié)合載量都下降,這時可按照下面方法對填料進行清洗。
1)3倍柱體積的去離子水;
2)3倍柱體積的0.1% SDS或0.1 M NaOH溶液;
3)3倍柱體積去離子水,20%乙醇2-8℃保存。
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