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參考價(jià)	200

蛋白研究

WB試劑

蛋白純化

IP/CoIP

LABLEAD

供貨周期	現(xiàn)貨	應(yīng)用領(lǐng)域	食品,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),制藥

Ni IDA Beads 4FF(鎳填料)屬于?類?屬螯合介質(zhì)，以?流速瓊脂糖為基質(zhì)，以次氮基三?酸（NTA）或亞氨基??酸（IDA）為配基，并螯合?屬離?Ni2+?形成的?種親和層析介質(zhì)。該親和介質(zhì)不僅具有吸附容量?、選擇性好、分辨率?、超低限度的Ni2+泄露、易于再?、成本低等優(yōu)點(diǎn)，還有利于保持產(chǎn)品的?物活性和提?產(chǎn)品的收率，從??泛?于?物制藥和?物?程下游蛋?質(zhì)、核酸及多肽的分離純化。

詳細(xì)介紹

Ni IDA Beads 6FF

產(chǎn)品貨號(hào)：N30230

儲(chǔ)存條件：2-8℃(20%?醇)

產(chǎn)品簡(jiǎn)介

LABLEAD的Ni親和層析介質(zhì)屬于?類?屬螯合介質(zhì)，以?流速瓊脂糖為基質(zhì)，以次氮基三?酸（NTA）或亞氨基??酸（IDA）為配基，并螯合?屬離?Ni²⁺?形成的?種親和層析介質(zhì)。該親和介質(zhì)不僅具有吸附容量?、選擇性好、分辨率?、超低限度的Ni²⁺泄露、易于再?、成本低等優(yōu)點(diǎn)，還有利于保持產(chǎn)品的?物活性和提?產(chǎn)品的收率，從??泛?于?物制藥和?物?程下游蛋?質(zhì)、核酸及多肽的分離純化，尤其是zu氨酸標(biāo)記蛋?質(zhì)的?效制備。

產(chǎn)品特點(diǎn)

使用耐壓基質(zhì),可以耐受最高0.3M Pa的壓力，更穩(wěn)定，因此該產(chǎn)品更適合用于工業(yè)大規(guī)模蛋白的純化，可以在相對(duì)較高的流速下實(shí)現(xiàn)對(duì)目的蛋白的純化。

相關(guān)數(shù)據(jù)

名稱	Ni-IDA beads 6FF
配基	亞氨基二乙酸(IDA)
基質(zhì)	6%高度交聯(lián)瓊脂糖
鰲含量	30~60umol/mL
載量（每ml）	40mg His標(biāo)簽蛋白
平均粒徑	90um，分布45~165um
推薦流速	150~600cm/h(根據(jù)柱子規(guī)格選擇合適流速)
最大耐壓	0.3MPa
pH穩(wěn)定性	3~12(工作)2~14(清洗)
化學(xué)穩(wěn)定性	40°C放置?周：0.01M HCl,0.1M NaOH； 12h:1M NaOH，70%?酸； 1h：2% SDS 30min：30%異丙醇
應(yīng)用	用于生物制藥和生物工程下游蛋白質(zhì)、及多膚的分離純化，尤其是zu氨酸標(biāo)記蛋白質(zhì)的高效制備

操作說明

Ni-IDA Chromrose 6FF可以在實(shí)驗(yàn)室被填裝到中壓層析柱中，以擴(kuò)大產(chǎn)量。將填料填裝到層析柱中，根據(jù)樣本量和填料載量選擇合適的層析柱和柱高。

1. 緩沖液準(zhǔn)備

所用緩沖液需要采用高純水配制，使用前建議用0.45um濾膜過濾。

平衡緩沖液：500mM NaCl，20mM Tris-Hcl，PH=7.4

漂洗緩沖液：500mM NaCl，20mM Tris-Hcl，10mM咪唑，PH=7.4

洗脫緩沖液：500mM NaCl，20mM Tris-Hcl，500mM咪唑，PH=7.4

2樣品準(zhǔn)備

為了避免堵塞層析柱，樣品應(yīng)經(jīng)離?或微濾處理.進(jìn)料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中?標(biāo)蛋?的含量計(jì)算。

3樣品純化

（1）平衡：

?5~10CV的平衡緩沖液平衡層析柱，?流出液電導(dǎo)和pH不變（與平衡液?致）。對(duì)于結(jié)合?較強(qiáng)的帶zu氨酸標(biāo)記的蛋?質(zhì)，平衡緩沖液中可加?低濃度（20~40mM）的咪唑。

（2）進(jìn)樣：樣品緩沖液應(yīng)盡可能與平衡液?致。固體樣品可?平衡液溶解配制；低濃度樣品溶液可?平衡液透析，?濃度樣品溶液可?平衡液稀釋。

（3）淋洗：上樣完畢后繼續(xù)?平衡緩沖液淋洗?基線。

（4）洗脫：洗脫?般有兩種?式，?是采?競(jìng)爭(zhēng)試劑，例如咪唑（0~0.5M）、zu氨酸（0~0.05M）、氯化銨（0~2M）等將蛋?質(zhì)從柱?上置換下來；?是減?pH值，洗脫?標(biāo)蛋?，?多數(shù)蛋?質(zhì)在pH4~6的范圍內(nèi)可被洗下來。?競(jìng)爭(zhēng)試劑咪唑或減小pH值的?法洗脫蛋?質(zhì)，?屬離子仍結(jié)合在柱?上；若?競(jìng)爭(zhēng)試劑zu氨酸或氯化銨洗脫蛋?質(zhì)，會(huì)將?屬離?和蛋?質(zhì)的復(fù)合物?起洗下來。

注：

為了減少雜蛋?在層析柱上的吸附，可在確保?標(biāo)蛋?吸附的情況下適當(dāng)增加樣品緩沖液中的咪唑。對(duì)于包涵體蛋?，相應(yīng)的可在平衡、上樣和洗脫的緩沖液中加?8M Urea或6M Gua-HCl。

洗脫緩沖液中必須加?0.15~1.0M NaCI，以消除離?交換作?。梯度洗脫最好在起始平衡液的恒定pH下進(jìn)?，可采?線性梯度或階越式梯度洗脫。

（5）再生：介質(zhì)使?數(shù)次（具體與樣品特性、樣品體積、?屬離?等有關(guān)）后，或者螯合其他?屬離?前，需要進(jìn)?再?處理。?先?2~3 CV的0.1M EDTA和0.5M NaCl pH7.0清洗柱?，并?2~3CV以上的0.5M NaCl溶液清洗，除去主柱上殘留的EDTA，然后再螫合相應(yīng)的?屬離?。若有變性蛋白質(zhì)或脂類物質(zhì)在再生過程中未能有效去除,可用原位清洗(CIP)的方法除去。

4原位清洗

為了避免不同樣品間的相互?擾，或者當(dāng)介質(zhì)污染?較嚴(yán)重時(shí)（反壓增加），需要對(duì)介質(zhì)進(jìn)?在位清洗。在位清洗前，需要預(yù)先除去介質(zhì)上螯合的?屬離?（?再?操作）。在位清洗時(shí)，可采?反向沖洗的?法。

（1）對(duì)于以離?鍵結(jié)合的蛋?，可?2~3CV以上的2M NaCl清洗，并?3CV以上的純?沖洗。

（2）對(duì)沉淀蛋?、以疏?性結(jié)合的蛋?或脂蛋?，可?1M NaOH清洗（1~2h），并?3~10CV平衡液和3CV以上的純?沖洗。

（3）對(duì)疏?性結(jié)合的蛋?、脂蛋?和脂類物質(zhì)，可?5~10CV的70%?醇或30%異丙醇清洗（20min以上），并?3~10CV的純?沖洗。

此外，也可?2CV含去污劑的堿性或酸性溶液清洗。如?0.1~0.5%的?離?去污劑+0.1M?酸沖洗1~2h，并?5~10CV的純?沖洗。