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| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 50T |
|---|---|---|---|
| 貨號 | YLK10391P | 應用領域 | 化工,生物產業(yè) |
| 主要用途 | 科研實驗 | 保存條件 | 低溫運輸，-20℃保存 |
| 有效期 | 12個月 | 試劑盒說明 | 不同批號的試劑盒組分不可交互使用 |
馬流行性感冒病毒RT-PCR檢測試劑盒
產品名稱：馬流行性感冒病毒RT-PCR檢測試劑盒
英文名稱：Method of the real-time RT-PCR for the detection of Equine Influenza Virus (50 reactions)
馬流感是馬、驢和騾的一種急性呼吸道疫病，由正黏病毒科 A 型流感病毒屬中的兩個 A 型流感病毒亞型引起，分別為H7N7（曾稱為馬-1 型）和 H3N8（曾稱為馬-2 型）。禽liu感病毒被認為是兩種亞型馬流感病毒的祖先，易感馬科動物的臨診癥狀表現(xiàn)為發(fā)熱、刺耳地干咳和鼻流黏性膿性分泌物。
本試劑盒是依據(jù)OIE3.5.7 章馬流感診斷國際標準中馬流感國際參考實驗室推薦的針對M 基因可以同時監(jiān)測H7N7 和H3N8 等馬流感病毒亞型的引物和探針序列，優(yōu)化反應參數(shù)配套生產，探針的 5` 端和 3`端分別標記不同的熒光素，如 5`端標記 FAM 熒光素，3`端是 TAMRA 修飾。
【試劑組成】
試劑盒組成成分 | 體積 |
核酸擴增試劑： DEPC 水 馬流感熒光 RT-PCR 反應液酶混合物 陰性對照 馬流感熒光陽性對照 |
1ml×1 管 750µL×1 管 55µL×1 管 1ml×1 管 1ml×1 管 |
3、 樣本采集,存放及運輸
3.1 樣本采集：所用取樣器材必須經高壓滅菌并烘干。
用于檢測多種樣本（如肌肉、臟器、鼻或咽喉拭子、血清或血漿、組織滲出液等）中馬流感病毒的 RNA。
3.2 存放：樣品應盡快研磨提取核酸進行檢測，-70 ℃以下可長期保存，但應避免反復凍融。
3.3 運輸：采用冰壺或泡沫箱加冰密封進行運輸。
4、 熒光 RT-PCR 檢測
4.1 操作方法
4.1.1 樣本的處理（在樣本制備進行）：
4.1.1.1 取 n 個滅菌的 1.5 mL Eppendorf 管，其中 n 為被檢樣品、陽性對照與陰性對照的和（陽性對照、陰性對照在試劑盒中已標出），做標記。(注：試劑盒中的陽性對照吹打混勻后直接作為PCR 檢測的模板，無需提取核酸)
4.1.1.2 每管加入 600 mL 裂解液，分別加入被檢樣本、陰性對照、陽性對照各 200 mL，一份樣本換用一個吸頭，再加入 200 mL 氯仿，混勻器上振蕩混勻 5 s（不能過于強烈，以免產生乳化層， 也可以用手顛倒混勻），于 4℃ 12 000 r/min 離心 15 min。
4.1.1.3 取與 4.1.1.1 相同數(shù)量滅菌的 1.5 mL Eppendorf 管，加入 500 mL 異丙醇（-20℃預冷）， 做標記。吸取 4.1.1.2 各管中的上清液轉移至相應的管中，上清液應至少吸取 500mL，不能吸出中間層，顛倒混勻。
4.1.1.4 于 4 ℃、12 000 r/min 離心 15 min（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉軸方向放置），小心倒去上清，倒置于吸水紙上，沾干液體(不同樣品須在吸水紙不同地方沾干)；加入 600 mL 75％ 乙醇，顛倒洗滌。
4.1.1.5 于 4 ℃、12 000 r/min 離心 10 min（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉軸方向放置），小心倒去上清，倒置于吸水紙上，盡量沾干液體（不同樣品須在吸水紙不同地方沾干）。
4.1.1.6 4 000 r/min 離心 10s（Eppendorf 管開口保持朝離心機轉軸方向放置），將管壁上的殘余液體甩到管底部，小心倒去上清，用微量加樣器將其吸干，一份樣本換用一個吸頭，吸頭不要碰到有沉淀一面，室溫干燥 3 min，不能過于干燥，以免 RNA 不溶。
4.1.1.7 加入 33 mL DEPC 水，輕輕混勻，溶解管壁上的 RNA，2 000 r/min 離心 5 s，冰上保存?zhèn)溆?。提取?RNA 須在 2 h 內進行 PCR 擴增；若需長期保存須放置-70 ℃冰箱內。
【推薦使用《《病毒基因組 DNA/RNA 離心柱型提取試劑盒》》，更方便快捷高效提取核酸】。注：提取的 RNA 須在 2 h 內進行 PCR 擴增；若需長期保存須放置-70 ℃冰箱內。
4.1.2 檢測
4.1.2.1 擴增試劑準備（在反應混合物配制區(qū)進行）：
從試劑盒中取出相應的熒光 RT-PCR 反應液、酶混合物，在室溫下融化后，2000 r/min 離心 5 s。設所需熒光 RT-PCR 檢測總數(shù)為 n，其中 n 為被檢樣品、陽性對照與陰性對照的和，每個樣品測試反應體系配制見表 2：
表 2 每個樣品測試反應體系配制表
試劑 | RT-PCR 反應液 | 酶混合物 |
用量 | 15 μL | 1.0 μL |
根據(jù)測試樣品的數(shù)量計算好各試劑的使用量，加入到適當體積試管中，充分混合均勻，向每個熒光RT-PCR管中各分裝15mL，轉移至樣本處理區(qū)。
4.1.2.2 加樣（樣本處理區(qū)進行）：
在各設定的熒光RT-PCR管中分別加入上述樣本處理步驟4.1.1.7中制備的RNA溶液各10 mL，蓋緊管蓋，500 r/min離心30 s。（陽性對照不需要提取核酸，可以直接吹打混勻后吸取當模板）
4.1.2.3 熒光 RT-PCR 檢測（在檢測區(qū)進行）：
將4.1.2.2中離心后的PCR管放入熒光RT-PCR檢測儀內，記錄樣本擺放順序。循環(huán)條件設置：
第一階段，反轉錄 42℃/30 min； 第二階段，預變性 94℃/2 min；
第三階段，94℃ /15sec，55℃/10 sec, 60℃/30 sec 共 40 個循環(huán).。熒光收集在第三階段每
次循環(huán)的 60℃延伸時進行。
試驗檢測結束后，根據(jù)收集的熒光曲線和Ct值判定結果。
4.2 結果判定
4.2.1 結果分析條件的設定 閾值設定原則：根據(jù)儀器噪聲情況進行調整，以閾值線剛好超過陰性對照品擴增曲線的最高點為準。對于多通道熒光 PCR 儀，選定 FAM(465-510)檢測通道讀取檢測結果， ABI 儀器選擇 5’FAM; 3’TAMRA 淬滅基團。
4.2.2 質控標準
a) 陰性對照無 Ct 值并且無擴增曲線。
b) 陽性對照的 Ct 值應小于等于 30，并出現(xiàn)典型的擴增曲線。
c) 如陰性和陽性對照不滿足以上條件，此次實驗視為無效。
4.2.3 結果判定
a) 陰性：無 Ct 值，且無特征性擴增曲線，表明樣品為陰性。
b) 陽性：Ct 值≤40.0，且出現(xiàn)典型的擴增曲線，表示樣品為陽性，含有馬流感病毒核酸。
【注意事項】
1. 實驗室應至少分三個區(qū)：樣品處理區(qū)、反應混合物配制區(qū)和檢測區(qū)。
2. 各區(qū)物品均為專用，不得交叉使用，避免污染。檢測結束后，應立即對工作臺進行清潔。
3. 分裝反應液時，應盡量避免產生氣泡。上機前注意檢查各反應管是否蓋緊，以免熒光物質泄露污染儀器。
4. 陽性對照在吸取前應在微量漩渦振蕩器上劇烈振蕩 1～2 秒。
5. 試劑盒中各組分應避免反復凍融。
【規(guī)格】 50 份/盒
【貯藏與有效期】熒光 RT-PCR 檢測試劑盒-20℃保存，有效期為 12 個月；《病毒基因組 DNA/RNA 離心柱型提取試劑盒》室溫保存。
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