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葉綠體的分離與熒光觀察

時間:2023/1/29閱讀:1048
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原理

組織勻漿后懸浮在等滲介質中進行差速離心,是分離細胞器的常用方法。一個顆粒在離心場中的沉降速率取決于顆粒的大小、形狀、密度、離心力及介質黏度等。同一離心場中,同一時間內,密度和大小不同的顆粒沉降速率不同。依次增加離心力和離心時間,就能使非均一的懸浮液中的顆粒按其大小、密度先后分批沉降在離心管底部,從而可分批收集各種亞細胞成分。

材料與儀器

新鮮菠菜
氯化鈉
離心機 組織搗碎機 顯微鏡 天平 離心管 紗布 燒杯 量筒 滴管 載玻片、蓋玻片

步驟

一、實驗步驟

1.  選取新鮮的嫩菠菜葉,洗凈擦干后去除葉梗及粗脈,稱30 g 于150 ml 0.35 mol/L NaCI溶液中,裝入組織搗碎機。
 
2.  利用組織搗碎機低速(5 000 r/min)勻漿3~5 min。
 
3.  將勻漿用6層紗布過濾于500 ml 燒杯中。
 
4.  取濾液4 ml 在1 000 r/min 下離心2 min。棄去沉淀。
 
5.  將上沾液在3 000 r/min下離心5 min。棄去上清液,沉淀即為葉綠體(混有部分細胞陔)。
 
6.  將沉淀用0.35 mol/L NaCI溶液懸浮。
 
7.  取葉綠體懸液一消滴于載片上,加蓋片后即可在普通光鏡和熒光顯微鏡下觀察。
 
(1)在普通光鏡下觀察。

(2)在熒光顯微鏡下觀察。

(3)取葉綠體懸液一滴滴在無熒光載片上,再漓加一滴0.01%吖啶橙熒光染料,加無熒光蓋片后即可以熒光顯微鏡下觀察。
 
菠菜葉手切片觀察用剖須刀將新鮮的嫩菠菜切削一斜面置于載片上,滴加1~2滴0.35 mol/L NaCI溶液,加蓋片后輕壓,置顯微鏡下觀察。
 
(1)在普通光鏡下觀察。

(2)在熒光顯微鏡下觀察。

(3)用同樣方法制片,但滴加1~2滴0.01%吖啶橙染液染色1 min,洗去余液,加蓋廾后即町以熒光顯微鏡下觀察。
 
二、實驗結果
 
1.  葉綠體的分離和觀察
 
(1)普通光鏡下,可看到葉綠體為綠色橄欖形,在高倍鏡下可看到葉綠體內部含有較深的綠色小顆粒,即基粒。
 
(2)以Olympus熒光顯微鏡為例,在選用B(blue)激發(fā)濾片,B雙色鏡和O530(orange)阻斷濾片的條件下,葉綠體發(fā)出火紅色熒光。
 
(3)加入吖啶橙染色后,葉綠體可發(fā)出桔紅色熒光,而其中混有的細胞核則發(fā)綠色熒色。
 
2.  菠菜葉手切片觀察
 
(1)在普通光鏡下可以看到三種細胞
 
①表面細胞:為邊緣呈鋸齒形的鱗片狀細胞。

②保衛(wèi)細胞:為構成氣孔的成對存在的腎形細胞。

③葉肉細胞:為排成柵狀的長方形和橢幽形細胞。
 
葉綠體呈綠色橄欖形,在高倍鏡下還可以看到綠色的基粒。
 
(2)在熒光顯微鏡下,葉綠體發(fā)出火紅色熒光,但其熒光強度要比游離葉綠體弱。氣孔發(fā)綠色熒光,兩保衛(wèi)細胞內的火紅色葉綠體則環(huán)繞氣孔排列成一圈。表皮細胞內葉綠體數(shù)量要比葉肉細胞少。
 

(3)用吖啶橙染色后,葉綠體則發(fā)出枯紅色熒光,細胞核町發(fā)出綠色熒光,氣孔仍為綠色。


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