結腸直腸腫瘤細胞的培養(yǎng)

時間：2022/12/7閱讀：897

原理

通常用酶消化腺瘤，用手術刀片將癌組織切碎。如果分化良好的結腸直腸癌標本切開后仍不易分離細胞，可用酶消化方法分離。

材料與儀器

用于傳代培養(yǎng)的Dispase
生長培養(yǎng)液洗液消化液
培養(yǎng)瓶

步驟

一、酶消化

1. 用洗液（洗液：添加 5% FBS、200 U/ml 青霉素、200 ug/ml 鏈霉素和 50 ug/ml 慶大霉素。在原代培養(yǎng)時，慶大霉素的作用至少維持一周，然后除去。）清洗腫瘤標本 4 次。

2. 將組織塊放入小量洗液中，洗液恰好浸沒組織塊（避免組織干）。用交叉的手術刀片或鋒利手術剪將組織塊剖成約 1 mm3 小塊。

3. 通過用臺式離心機離心（300 g，3 min），將組織塊清洗 4 次。清洗次數(shù)以經(jīng)驗而定，并根據(jù)細胞污染情況。

4. 將組織塊放入消化液（消化液：DMEM，添加的抗菌素同洗液，并添加 1.5 mg/ml 膠原蛋白酶（ IV型，Worthington）、0.25 mg/ml 透明質酸酶（ I 型，Sigma）和 2.5%~5% FBS。盡管常用 Worthington 公司生產的膠原蛋白酶，也可試用 Sigma 公司生產的培養(yǎng)級別的膠原蛋白酶。），在 37℃ 條件下?lián)u晃，通常過夜（約 12~16 h )。由于消化是一個緩慢過程，組織塊在消化液中的時間多少并不要緊，重要的是在此過程中不讓消化液變?yōu)樗嵝?。?pH 說明組織塊在消化液中的時間過長或放入消化液中的組織塊過多。將約 1 cm3 腫瘤組織放入 20~40 ml 消化液。

二、非酶消化

腺瘤總是需要用酶消化。然而，常發(fā)現(xiàn)在用手術刀片將癌組織切成 1 mm3 、時小的細胞簇從腫瘤組織脫落入洗液中。在這種情況，可按下列步驟操作。

1. 收集含有脫落細胞簇的洗液。

2. 將離心管放置幾分鐘，通過重力使細胞簇沉降，將組織塊與小的細胞簇分開。

3. 吸出上清液。

4. 直接培養(yǎng)剩下組織塊，或者將組織塊放入洗液內，輕輕搖晃 30~60 min，以便使更多的小細胞簇脫落下來，然后收集細胞簇，種植于培養(yǎng)皿內，與剩余的組織塊分開培養(yǎng)。

5. 在種植于培養(yǎng)皿內之前，將所有標本洗 3 次。

三、原代培養(yǎng)的標準條件

1. 在預涂膠原蛋白和種植飼養(yǎng)細胞的 25 cm2 培養(yǎng)瓶，用 4 ml 培養(yǎng)液培養(yǎng)從腫瘤組織分離的上皮性小管和細胞簇。

2. 在含有 5% CO2 和 37 ℃ 的培養(yǎng)箱內培養(yǎng)。

3 . 每周換培養(yǎng)液兩次。

小管和細胞在 1~2 d 內開始附著底物，上皮細胞遷移出來。大多數(shù)小管和小的上皮塊在 7 d 內貼壁，但大的類器官物需要 6 周才能貼壁，盡管貼壁時間有所變化。

如果將細胞接種于預涂膠原蛋白的培養(yǎng)瓶（Biocoat，B-D Biosciences），在原代培養(yǎng)過程中上皮容易貼壁。與無 3T3 詞養(yǎng)層相比，將細胞接種于 3T3 飼養(yǎng)層上時細胞生長非常好。當上皮細胞克隆擴增至每個克隆有幾百個細胞時，它們變得不依賴于 3T3 飼養(yǎng)層，故不必再加入詞養(yǎng)層細胞。

四、繼代培養(yǎng)和擴增

不能用常規(guī)的胰蛋白酶和 EDTA 混合液處理方法對大多數(shù)結腸直腸腺瘤的原代細胞和腺瘤細胞系進行傳代 [ Paraskeva et al.， 1984，1985 ]。由于用 0.1 % 胰蛋白酶（用 0.25 mmol/L EDTA 配制）將腺瘤細胞分散為單細胞導致細胞生長很差，故換用 Dispase。

1. 將 Dispase 液注于細胞單層上，恰好浸沒細胞（每個 25 cm2 培養(yǎng)瓶約 2.5 ml）。對原代細胞處理 40~60 min，而對細胞系處理 20~40 min。

2. 一旦上皮細胞層開始去附著（去附著的是細胞片，而不是單細胞），用吸管吹打，以促進去附著，使細胞片分散成細胞簇。

3. 在標準的培養(yǎng)條件下清洗和種植細胞。幾天后細胞簇去附著，故應輕輕換液。

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