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如何從培養(yǎng)細(xì)胞中制備細(xì)胞核基質(zhì)/中間纖維骨架結(jié)構(gòu)?

時間:2021/11/18閱讀:859
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材料與儀器

細(xì)胞
Tritron X-100 抽提緩沖液
電子顯微鏡

步驟

1. 在 4℃ 用 PBS 洗細(xì)胞一次。

2. 在 4℃ 用含 0.5% Tritron X-100 的細(xì)胞骨架緩沖液抽提細(xì)胞 3 到 5 分鐘。直到消化步驟,每 107 個細(xì)胞最少要用 1 ml 緩沖液,以后減半。

3. 在 4℃ 用抽提緩沖液抽提細(xì)胞 3~5 分鐘。這一步去除組蛋白 H1 和除中間纖維蛋白之外的細(xì)胞骨架蛋白。另外,這一步也可在 DNA 酶消化步驟(第 4 步)之后作,這樣也不會引起超微結(jié)構(gòu)的變化。

抽提緩沖液:

10 mmol/L PIPES,pH 6.8

250 mmol/L 硫酸銨

300 mmol/L 蔗糖

3 mmol/L MgCl2

1 mmol/L EDTA

4. 在含 0.5% Triton X-100 的消化緩沖液中用無 RNA 酶的 DNA 酶消化以去除染色質(zhì) DNA 酶濃度為 200~400 單位/ml,32℃ 反應(yīng) 30~50 分鐘。

含 0.5% Triton X-100 的消化緩沖液:

10 mmol/L PIPES,pH 6.8

300 mmol/L 蔗糖

50 mmol/L NaCl

3 mmol/L MgCl2

1 mmol/L EGTA

5. 用抽提緩沖液清洗樣品兩次,每次 5 分鐘。

6. (可選)樣品在 4℃ 用 2 mol/L NaCl 抽提 3~5 分鐘。這一步能使可能形成核基質(zhì)核心的 10 nm 纖絲分支顯形(Jackson and Cook 1988; He et al, 1990)。在第 4 步中用 Hae Ⅲ 和 Pst Ⅰ(每種酶 400 單位/ml)代替 DNA 酶 Ⅰ 可以使核心纖絲保存的更好。

2 mol/L NaCl 緩沖液:

10 mmol/L PIPES,pH 6.8

300 mmol/L 蔗糖

2 mol/L NaCl

3 mmol/L MgCl2

1 mmol/L EGTA

7. 固定核基質(zhì)以進行免疫熒光檢測或電子顯微鏡檢測。


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