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PriCells: 樹突細(xì)胞的分離-用小鼠骨髓前體細(xì)胞培養(yǎng)樹突細(xì)胞

時間:2021-9-23 閱讀:181
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PriCells: 樹突細(xì)胞的分離-用小鼠骨髓前體細(xì)胞培養(yǎng)樹突細(xì)胞
實驗材料:
1.    6-7周齡小鼠(最好為雄性鼠,因為它們的骨頭比較粗大;運(yùn)輸后需要休息至少5天;不要使用應(yīng)激或脫水的老鼠)
2.    70%乙醇
3.    冰冷的以及室溫的RPMI-1640培養(yǎng)基(如Life Technologies)
4.    氯化銨溶液0.02mol/L Tris·Cl,pH7.2 /0.14mol/L NH4Cl
5.    裂解淋巴細(xì)胞的抗體(雜交瘤上清)(可選)。例如,雜交瘤RA3-3A1(B220抗體;ATCC號TIB146)、GK1.5(CD4抗體;ATCC號TIB207)、3.155(CD8抗體;ATCC號TIB211)、M5/114(MHCⅡ抗體;ATCC號TIB120)
6.    兔補(bǔ)體(Pel-Freez)
7.    RPMI-5*培養(yǎng)基
8.    小鼠GM-CSF(mGM-CSF):可以來源于純化的重組蛋白,也可來源于轉(zhuǎn)染小鼠GM-CSF基因的細(xì)胞系的條件培養(yǎng)基
9.    用于流式細(xì)胞檢測DC的抗體:如MHCⅡ類分子的雜交瘤上清(ATCC號TIB120)、B7-2/CD86的雜交瘤上清(Pharmingen)、DEC-205的抗體(ATCC號HB290)
10.    解剖用品
11.    無菌紗布墊
12.    100mm培養(yǎng)皿(如Falcon)
13.    3ml注射器25G,5/8in(1.58cm)針頭
14.    9in(23cm)巴氏吸管(填充棉花并高壓滅菌)
15.    Nytex濾器(3-40/26;Tetko)
16.    15ml和50ml聚丙烯錐底管
17.    24孔培養(yǎng)板(如Corning)
 
實驗方法:
1.    取小鼠股骨和脛骨,保存在置于冰上的RPMI-1640培養(yǎng)基中,直到所有的小鼠準(zhǔn)備完畢。去除骨頭上的肌肉(通常在無菌紗布墊操作)后,將干凈的骨頭置于新的平皿里。然后在含70%乙醇的培養(yǎng)皿里浸泡骨頭2min,最后用冷RPMI-1640培養(yǎng)基洗滌2遍。
2.    用剪刀剪去骨的兩端(骺)然后將其轉(zhuǎn)移到另外的培養(yǎng)皿中。用注射器吸取2ml RPMI-1640培養(yǎng)基沖洗骨髓腔以獲得骨髓。在另一培養(yǎng)皿里剁碎骨骺。將剁碎的骨骺以及從骨髓腔里沖洗出來的骨髓混合在一起,用吸管打碎團(tuán)塊,將懸液通過篩網(wǎng)(去除顆粒)后收于15ml或者50ml的離心管里。
3.    加入3-10ml的氯化銨溶液裂解紅細(xì)胞。室溫靜置3min后,室溫,280g離心10min(1200r/min Beckman GH-3.7轉(zhuǎn)子),棄上清。
4.    去除淋巴細(xì)胞(可選):將細(xì)胞配成1×107個細(xì)胞/ml,加入合適濃度的雜交瘤上清(通常1:20終濃度)和兔補(bǔ)體(通常1:17-1:20終濃度)。37℃水浴培養(yǎng)1h,每20min振蕩一次。
5.    用RPMI-1640洗滌骨髓細(xì)胞2次,室溫,280g離心10min。計數(shù)活細(xì)胞。用RPMI-5*培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞濃度至1×106個細(xì)胞/ml。
6.    加入小鼠重組GM-CSF至終濃度為700-1000U/ml或者20ng/ml。將細(xì)胞懸液一般每只小鼠可以得到4×107-5×107個骨髓細(xì)胞(沒有去除淋巴細(xì)胞)按1ml/孔接種24孔板。
7.    每2天洗滌細(xì)胞一次,每次移出舊的培養(yǎng)基,然后傾斜24孔板用RPMI-1640輕輕地沿孔壁洗滌后吸出洗滌液,最后加入1ml新的含700-1000U/ml(約20 ng/ml)mGM-CSF的RPMI-5*培養(yǎng)基(步驟6)。
8.    可選:驗證聚集物的特征--MHCⅡ類分子存在于不成熟DC的胞內(nèi)小室(MHCⅡ小室或者M(jìn)ⅡC)通過標(biāo)記〔3H〕胸腺嘧啶,可發(fā)現(xiàn)10%-20%的細(xì)胞處于S期,用流式細(xì)胞儀分析,細(xì)胞中度表達(dá)膜MHCⅡ類分子,但是不表達(dá)B7-2/CD86共刺激分子。
9.    在第5-8天期間(此時已產(chǎn)生足夠的聚集體),用RPMI-1640或RPMI-5培養(yǎng)基輕輕吹打,將聚集體從貼壁的基質(zhì)細(xì)胞上脫離下來(此后幾天一直會有聚集體產(chǎn)生)。收集脫離的細(xì)胞,室溫,280g離心10min,棄上清。用RPMI-5培養(yǎng)基重懸,最高濃度1×106個細(xì)胞/ml。然后鋪在直徑為100mm的培養(yǎng)皿中,每個培養(yǎng)皿10ml,最多鋪1×107個細(xì)胞。
10.    于細(xì)胞轉(zhuǎn)移后24-48h期間,每24h輕輕搖晃培養(yǎng)皿,收集非貼壁、非增殖、成熟的DC,轉(zhuǎn)移至另外的收集管中用于后期的研究。
11.    計數(shù)活細(xì)胞。用流式細(xì)胞儀或者用血細(xì)胞計數(shù)板計數(shù)大的形狀不規(guī)則的細(xì)胞來檢測DC得率(每只動物通常獲得5×106-10×106個細(xì)胞,≥60%表達(dá)成熟DC的表面標(biāo)志)。


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