糖化血清蛋白含量檢測試劑盒（NBT法）（微量法）

產(chǎn)品貨號：BA1893

產(chǎn)品規(guī)格：100T/96S

產(chǎn)品簡介：

血清葡萄糖與白蛋白及其它血清蛋白分子N末端的氨基發(fā)生非酶促糖化反應，形成高分子酮胺結構，在堿性條件下與硝基四氯唑藍反應，生成紫紅色化合物甲臜。在530nm波長處比色，測定其OD值，與DMF標準比較，即可求得其含量。

注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

產(chǎn)品組成：

溶液的配制：

標準品：臨用前加入0.8mL試劑二，充分溶解，配制成10mmol/L DMF標準液，2-8℃保存4周；再取20µL 10 mmol/L DMF標準液和30µL試劑二混合配制成成4mmol/L標準溶液待測。

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計/酶標儀、恒溫培養(yǎng)箱、低溫離心機、可調(diào)式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、冰和蒸餾水。

操作步驟：

一、樣本處理（可適當調(diào)整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）

血清（漿）：收集血清（漿）到離心管內(nèi)，按照血清（漿）體積（mL）∶試劑一體積（mL）= 10∶1的比例（建議吸取0.2mL血清（漿）于EP管中，加入0.02mL試劑一），充分混勻，于37℃保溫30min。

二、測定步驟

1. 可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上，調(diào)節(jié)波長至530nm，蒸餾水調(diào)零。

2. 標準溶液：按照標準溶液體積（mL）：試劑一體積（mL）= 10∶1的比例（建議吸取0.2mL 4mmol/L標準溶液于EP管中，加入0.02mL試劑一），充分混勻，于37℃保溫30min。

3. 按下表步驟加樣：

注：空白管和標準空白管均只需做1-2次。

三、糖化血清蛋白含量計算

糖化血清蛋白含量（mmol/L）=C×ΔA測定÷ΔA標準×F= 4×ΔA測定÷ΔA標準×F

C：標準溶液濃度，4mmol/L；F：稀釋倍數(shù)。

注意事項：

1. 顯色完成后，應立即加入試劑四；建議一次性不要做太多樣本，防止試劑四加入不及時導致測定結果受到影響。

2. 如果測定吸光值A＞1.5或ΔA＞1，建議稀釋樣本后再測定，計算公式中乘以稀釋倍數(shù)；如果測定吸光值較低或接近空白OD值，建議增加操作表中的樣本量后再進行測定（空白管、標準管、標準空白管需要增加至相同體積量）。