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工作原理：
磷酸化 STAT3（Tyr705）檢測原理：
磷酸化 STAT3（Tyr705）檢測用于測量在 Tyr705 位點磷酸化的 STAT3。與蛋白質(zhì)印跡法不同，該檢測基于微孔板，不需要凝膠、電泳或轉(zhuǎn)膜。磷酸化 STAT3（Tyr705）檢測使用兩種標記抗體：一種帶有供體熒光團，另一種帶有受體。第一種抗體因其對蛋白質(zhì)上磷酸化基序的特異性結(jié)合而被選擇，第二種抗體因其能夠識別不依賴于其磷酸化狀態(tài)的蛋白質(zhì)的能力而被選擇。蛋白質(zhì)磷酸化使得涉及兩種標記抗體的免疫復合物形成，這使供體熒光團與受體緊密接近，從而產(chǎn)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移（FRET）信號。其強度與樣品中存在的磷酸化蛋白的濃度直接成正比，并在無需洗滌的檢測形式下提供了一種評估蛋白質(zhì)磷酸化狀態(tài)的方法。

磷酸化 STAT3（Tyr705）雙板檢測方案：
雙板方案涉及在 96 孔板中培養(yǎng)細胞，然后進行裂解，接著將裂解物轉(zhuǎn)移到 384 孔低體積檢測板中，之后加入磷酸化 STAT3（Tyr705）HTRF 檢測試劑。該方案能夠監(jiān)測細胞的活力和融合度。

磷酸化 STAT3（Tyr705）單板檢測方案：
使用 HTRF 試劑檢測磷酸化 STAT3（Tyr705）可以在一個用于培養(yǎng)、刺激和裂解的單板上進行。無需洗滌步驟。這個為高通量篩選設計的方案能夠?qū)崿F(xiàn)微型化，同時保持強大的 HTRF 質(zhì)量。

檢測驗證：
使用磷酸化 STAT3 檢測進行 HTRF 與蛋白質(zhì)印跡法的比較：
HeLa 細胞在 T175 培養(yǎng)瓶中于 37°C、5% 二氧化碳的條件下培養(yǎng) 2 天。用 5nM 的 IFNα 刺激 15 分鐘。移除細胞培養(yǎng)基，向細胞中加入 3ml 裂解緩沖液，然后孵育 45 分鐘。離心 10 分鐘后收集可溶性上清液。使用等量的裂解物對蛋白質(zhì)印跡法和 HTRF 進行并行比較。這兩種方法顯示出相當?shù)撵`敏度水平：750 個細胞。HTRF 比蛋白質(zhì)印跡法具有更高的便利性。

在 NIH 3T3 細胞上的 IL6 劑量反應：
小鼠 NIH 3T3 細胞（每孔 100,000 個細胞）在 37°C 下用各種濃度的 IL6 刺激 30 分鐘。經(jīng)過 30 分鐘的裂解孵育時間后，使用 HTRF 磷酸化 STAT3（Tyr705）細胞檢測試劑盒的雙板檢測方案測量磷酸化的 STAT3。

JAK 抑制劑對 HeLa 細胞的抑制作用：
HeLa 細胞（每孔 100,000 個細胞）在 37°C 下用各種濃度的拮抗劑孵育 1 小時。然后加入激動劑（IFNα）并孵育 30 分鐘。經(jīng)過 30 分鐘的裂解孵育時間后，使用 HTRF 磷酸化 STAT3（Tyr705）細胞檢測試劑盒的雙板檢測方案測量磷酸化的 STAT3。

用 HTRF 總 STAT3 檢測來檢查 STAT3 的磷酸化狀態(tài)：
使用磷酸化 STAT3（Tyr705）和總 STAT3 檢測的雙板檢測方案，用 IFNα 激活 HeLa 細胞（每孔 100,000 個細胞）15 分鐘。獲得的結(jié)果顯示在 IFNα 刺激下 STAT3 磷酸化呈劑量反應性增加，而 STAT3 的表達水平保持恒定。

簡化的通路：
STAT3 在細胞因子受體信號通路中的作用：
響應細胞因子和生長因子，STAT3 被受體相關激酶磷酸化，然后形成二聚體轉(zhuǎn)移到細胞核，在那里它們作為轉(zhuǎn)錄激活因子起作用。STAT3 響應細胞刺激介導多種基因的表達，因此在許多細胞過程中如細胞生長和凋亡中起著關鍵作用。白細胞介素 6 家族細胞因子與 gp130 受體的結(jié)合通過 JAK2 觸發(fā) STAT3 磷酸化。STAT3 也是其他受體如受體激酶（EGFR、cmet.）和 c-src 的靶標。