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目錄:上海貝博生物科技有限公司>>細(xì)胞分析>>細(xì)胞凋亡>> Annexin V-APC / 7-AAD 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒

Annexin V-APC / 7-AAD 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒
  • Annexin V-APC / 7-AAD 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒
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產(chǎn)品概述 product description 細(xì)胞凋亡是細(xì)胞的基本特征之一,它在機(jī)體的胚胎發(fā)育、組織修復(fù)、內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定和一些疾病發(fā)生過程等方面起著十分重要的作用。 在正常細(xì)胞中,磷脂酰(PS)只分布在細(xì)胞膜脂質(zhì)雙層的內(nèi)側(cè),而在細(xì)胞凋亡早期,細(xì)胞膜中的磷脂酰(PS)由脂膜內(nèi)側(cè)翻向外側(cè)。在體內(nèi),巨噬細(xì)胞可以識(shí)別翻轉(zhuǎn)到細(xì)胞膜表面的PS 從而將這些程序性死亡的細(xì)胞清除,因此凋亡過程中并不伴隨局部的炎癥反應(yīng),而在細(xì)胞壞死的過程中則常常伴隨著炎癥反應(yīng)。 AnnexinⅤ是一種分子量為35-36kD的Ca2+依賴性磷脂結(jié)合蛋白,能與細(xì)胞凋亡過程中翻轉(zhuǎn)到膜外的PS高親和力特異性結(jié)合。PS 外翻發(fā)生在細(xì)胞核破裂,DNA 片段化以及凋亡相關(guān)蛋白出現(xiàn)之前,這使得Annexin V 與PS 的結(jié)合成為凋亡早期的一種重要......
保存溫度
2-8℃避光
注意事項(xiàng)
1.開蓋前請(qǐng)離心。
2.開蓋后組份按要求條件保存。
3.拆封后請(qǐng)盡快使用完!
有效期
1年
檢測(cè)方法
1.流式細(xì)胞儀
2.激光共聚焦
3.熒光顯微鏡
適用樣本
1.懸浮細(xì)胞
2.貼壁細(xì)胞
產(chǎn)品特點(diǎn)
1.方便:可用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡檢測(cè);
2.快速:1小時(shí)內(nèi)即可完成實(shí)驗(yàn);
3.準(zhǔn)確:能準(zhǔn)確區(qū)分活細(xì)胞、凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞,并計(jì)數(shù)各群細(xì)胞的比例。
產(chǎn)品應(yīng)用
1.流式細(xì)胞儀
2.激光共聚焦
3.熒光顯微鏡
儀器準(zhǔn)備
1.流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡或激光共聚焦
2.離心機(jī)
3.移液器
4.冰箱
5.冰盒
試劑準(zhǔn)備
1.PBS 緩沖液(pH7.4,實(shí)驗(yàn)室常用的10mM磷酸緩沖鹽溶液(1X))
2.或者HBSS(Hank's Balanced Salt Solution)
耗材準(zhǔn)備
1.離心管
2.吸頭
3.一次性手套
4.鋁箔

使用注意事項(xiàng)
1.螺旋蓋微量試劑管裝的試劑在開蓋前請(qǐng)短暫離心,將蓋內(nèi)壁上的液體收集至管底,避免開蓋時(shí)液體損失導(dǎo)致試劑量不夠用。
2.細(xì)胞處理需要小心操作,盡量避免人為的損傷細(xì)胞。離心力在不損失細(xì)胞的前提下盡可能小,重懸細(xì)胞是動(dòng)作要輕柔,避免多次反復(fù)的激烈吹打。不用渦旋振蕩器。
3.Annexin V-FITC(等)和Propidium iodide(等)是光敏物質(zhì),在操作時(shí)請(qǐng)注意避光,盡量減少它們暴露在光下的時(shí)間。有必要時(shí)可以使用帶蓋子的冰盒或鋁箔紙避光。標(biāo)記后將細(xì)胞保持在避光環(huán)境中。移液過程中短暫暴露在光線下(<30秒)是可以接受的。
4.由于細(xì)胞凋亡是一個(gè)快速和動(dòng)態(tài)的過程,因此在染色后立即進(jìn)行分析。
5.使用Annexin V-FITC(等) 試劑盒檢測(cè)凋亡需要針對(duì)活細(xì)胞。不要固定細(xì)胞,固定操作會(huì)對(duì)結(jié)果產(chǎn)生干擾。
使用方法

樣品染色:
1、 離心收集懸浮細(xì)胞。離心機(jī)300-500g力,2-8°C,離心時(shí)間5分鐘,棄培養(yǎng)基。
2、 用冷PBS洗滌細(xì)胞兩次。(300g-400g,2-8°C,離心時(shí)間5分鐘收集細(xì)胞)。
3、 用100 μl 1X Annexin V結(jié)合液懸浮細(xì)胞,濃度大約為1-5 X 106 cells/ml。
4、 在細(xì)胞懸浮液中加入5 μl Annexin V-APC染色液,輕輕混勻后于2-8°C避光條件下孵育5-10分鐘。
5、 加入5-10 μl 7-AAD染色液后輕輕混勻于2-8°C避光條件下孵育1-3分鐘。
6、 加入400 μl PBS或1X Annexin V結(jié)合液,輕輕混勻。
7、 立即用流式細(xì)胞儀檢測(cè)。

流式細(xì)胞儀分析:
經(jīng)處理過的細(xì)胞此時(shí)可以在流式細(xì)胞儀上分析。
按照常規(guī)的流式凋亡檢測(cè)的操作即可。
Annexin V-APC的熒光激發(fā)波長652 m,發(fā)射波長670 m;7-AAD熒光激發(fā)波長546m,發(fā)射波長在647m。

上機(jī)檢測(cè)前,須用待測(cè)細(xì)胞制備質(zhì)控樣本來設(shè)定流式細(xì)胞儀的熒光補(bǔ)償和設(shè)置十字門的范圍:
(I) 未轉(zhuǎn)染GFP等標(biāo)記的細(xì)胞
① 空白管:陰性對(duì)照組細(xì)胞,沒有染色的細(xì)胞。不加Annexin V/APC,7-AAD。用于調(diào)節(jié)電壓。
② 單染管:有明顯凋亡的細(xì)胞,只加Annexin V/APC染色。用于調(diào)節(jié)補(bǔ)償。
③ 單染管:有明顯凋亡的細(xì)胞,只加7-AAD染色。用于調(diào)節(jié)補(bǔ)償
④ 檢測(cè)管:待測(cè)的處理細(xì)胞,加Annexin V/APC,7-AAD。用空白管和單陽管調(diào)節(jié)好電壓補(bǔ)償后,獲得所需要的流式數(shù)據(jù)。

(II) 轉(zhuǎn)染GFP細(xì)胞
① 未轉(zhuǎn)染空白管:未轉(zhuǎn)染細(xì)胞,陰性對(duì)照組細(xì)胞,沒有染色的細(xì)胞。不加Annexin V/APC,7-AAD 。用于調(diào)節(jié)電壓。
② 轉(zhuǎn)染GFP空白管:轉(zhuǎn)染GFP的對(duì)照組細(xì)胞,沒有染色的細(xì)胞。不加Annexin V/APC,7-AAD。用于調(diào)補(bǔ)償
③ 未轉(zhuǎn)染單染管:未轉(zhuǎn)染且有明顯凋亡的細(xì)胞,只加Annexin V/APC染色。用于調(diào)節(jié)補(bǔ)償。
④ 未轉(zhuǎn)染單染管:未轉(zhuǎn)染且有明顯凋亡的細(xì)胞,只加7-AAD染色。用于調(diào)節(jié)補(bǔ)償
⑤ 檢測(cè)管:待測(cè)的處理細(xì)胞,加Annexin V/APC,7-AAD 。用空白管和單陽管調(diào)節(jié)好電壓補(bǔ)償后,獲得所需要的流式數(shù)據(jù)。

【注】:
? 具體流式設(shè)置按常規(guī)方法即可。
請(qǐng)參照流式細(xì)胞儀說明書或咨詢所使用的儀器的技術(shù)支持。
常見問題分析
實(shí)驗(yàn)過程中Annexin V染不上色或陽性率偏低??赡艿脑蛉缦拢?br>1. 用于檢測(cè)的流式細(xì)胞儀/顯微鏡設(shè)置不當(dāng)。調(diào)整使用正確的儀器設(shè)置。
2. 確定實(shí)驗(yàn)中的誘導(dǎo)劑是否能產(chǎn)生凋亡??赏ㄟ^設(shè)定確切凋亡誘導(dǎo)效果的陽性藥物對(duì)照來排除這一情況。
3. 細(xì)胞未啟動(dòng)凋亡。重新確定誘導(dǎo)后凋亡啟動(dòng)的時(shí)間點(diǎn)(時(shí)程實(shí)驗(yàn))。
4. 細(xì)胞數(shù)量偏少。增加細(xì)胞數(shù)量。
5. 貼壁細(xì)胞消化不當(dāng)。Annexin V 跟PS 的結(jié)合需要Ca2+離子,結(jié)合液中含有Ca2+,EDTA 的消化會(huì)影響染色,建議使用無EDTA 的,或者消化后用PBS洗滌干凈。

實(shí)驗(yàn)過程中陽性率偏高??赡艿脑蛉缦拢?br>1. 用于檢測(cè)的流式細(xì)胞儀/顯微鏡設(shè)置不當(dāng)。調(diào)整使用正確的儀器設(shè)置。
2. 細(xì)胞本身活力太差。實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)未經(jīng)誘導(dǎo)凋亡的對(duì)照細(xì)胞經(jīng)染色后AnnexinV+/PI+雙陽性的細(xì)胞比例過高,造成這種結(jié)果的原因可能是細(xì)胞本身活力太差。建議用臺(tái)盼藍(lán)染色計(jì)算細(xì)胞的活力,臺(tái)盼藍(lán)拒染的細(xì)胞應(yīng)大于95%。若活力偏低低,建議重新復(fù)蘇細(xì)胞,通常剛復(fù)蘇的細(xì)胞至少要傳代3 次以后才能進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
參考文獻(xiàn)
1.Hongjuan Li, et al.
Nucleus-targeted nano delivery system eradicates cancer stem cells by combined thermotherapy and hypoxia-activated chemotherapy
Biomaterials 2019 (IF=10.317)

2.Wei Bing, et al.
Programmed Bacteria Death Induced by Carbon Dots with Different Surface Charge
Small 2016 (IF=11.459)

3.Linchong Sun, et al.
cMyc-mediated activation of serine biosynthesis pathway is critical for cancer progression under nutrient deprivation conditions
Cell Research 2015 (IF=20.507) 4.Kerong Deng, et al.
Enhanced Antitumor Efficacy by 808 nm Laser-Induced Synergistic Photothermal and Photodynamic Therapy Based on a Indocyanine-Green-Attached W18O49 Nanostructure
Advanced Functional Materials 2015 (IF=16.836)

5.Wenqiao Zang, et al.
miR-663 attenuates tumor growth and invasiveness by targeting eEF1A2 in pancreatic cancer
Molecular Cancer 2015 (IF=15.302)

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