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磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟
閱讀:211 發(fā)布時(shí)間:2022-4-27磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟
分光光度法50管/48樣
注 意 :正式測定之前選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定。
測定意義:
植物葉綠體中磷酸丙糖異構(gòu)酶是光合作用中參與calvin循環(huán)的重要酶。作用于磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮之間的轉(zhuǎn)化,磷酸二羥丙酮能快速透過葉綠體的包膜進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),并在其中逐步轉(zhuǎn)化為蔗糖。
測定原理:
磷酸丙糖異構(gòu)酶將磷酸二羥丙酮轉(zhuǎn)化為3-磷酸甘油醛,3-磷酸甘油醛與NAD在3-磷酸甘油醛脫氫酶的作用下生成3-磷酸甘油酸和NADH,340nm處的吸光度變化反映了磷酸丙糖異構(gòu)酶的活性的高低。
自備實(shí)驗(yàn)用品及儀器:
天平、低溫離心機(jī)、研缽、震蕩儀、紫外分光光度計(jì)、1 mL石英比色皿。
試劑組成和配制:
提取液一:液體50mL×1瓶,4℃保存。
提取液二:液體50mL×1瓶,4℃保存。
試劑一:液體30mL×1瓶,4℃保存。
試劑二:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融。
試劑三:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5 mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融。
試劑四:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5 mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融。
磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟酶液提取:
①總TPI酶提?。?/span>建議稱取約0.1g樣本,加入1mL提取液一,冰浴勻漿后超聲破碎(冰浴,200W,破碎3s,間歇7s,總時(shí)間1min),然后4℃,8000g離心10min,取上清測定。
②胞漿和葉綠體TPI酶的分離:按照植物組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g樣本,加入1mL提取液一),冰浴勻漿后于4℃,200g離心5min,棄沉淀,取上清在4℃,8000g離心10min,取上清用于測定胞漿TPI酶活性,取沉淀加1mL提取液二,震蕩溶解后超聲破碎(冰浴,200W,破碎3s,間歇7s,總時(shí)間1min),然后4℃,8000g離心10min,取上清測定葉綠體中TPI酶活性。
建議測定總TPI酶活性,按照步驟①提取粗酶液,若需要分別測定胞漿和葉綠體中的TPI,則按照步驟②提取粗酶液。
測定操作:
1. 分光光度計(jì)預(yù)熱30min,調(diào)節(jié)波長至340nm,蒸餾水調(diào)零。
2. 取1mL石英比色皿,依次加入600μL試劑一,100μL試劑二,100μL試劑三,100μL試劑四,100μL粗酶液,充分混勻,記錄340nm處10s的吸光值A1和310s的吸光值A2,△A=A2-A1
計(jì)算公式:
(1)按照樣本蛋白濃度計(jì)算
酶活單位定義:每毫克組織蛋白每分鐘生成1 nmol的NADH定義為一個(gè)酶活力單位。
TPI(nmol/min /mg prot)= ΔA÷(ε×d)×V反總÷(V樣×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr
(2)按照樣本質(zhì)量計(jì)算
酶活單位定義:每克組織每分鐘生成1 nmol的NADH定義為一個(gè)酶活力單位。
TPI(nmol/min /g 鮮重)= ΔA÷(ε×d)×V反總÷(W ×V樣÷V樣總) ÷T=321.54×ΔA÷W
V反總:反應(yīng)體系總體積,1mL;ε:NADH摩爾消光系數(shù),6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光徑,1cm;V樣:加入樣本體積,0.1mL;V樣總:加入提取液體積,1mL;T:反應(yīng)時(shí)間,5 min;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g
磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟