登革熱病毒PCR檢測試劑盒 

 產(chǎn)品名稱：登革熱病毒PCR檢測試劑盒；

 產(chǎn)品用途：本PCR-熒光探針法體外定性檢測登革熱病毒核酸；

 產(chǎn)品規(guī)格：24T/盒； 

 保存條件：避光 -20度 保存。

歡迎咨詢

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    我司提供各種流感病毒、副流感病毒、呼吸道合胞病毒、冠狀病毒、輪狀病毒、桿菌、鏈球菌、熱帶病毒等等核酸檢測試劑盒（PCR-熒光探針法），隨時歡迎您的來電

我司還提供其它進口或國產(chǎn)試劑盒：登革熱、瘧疾、流感、A鏈球菌、合胞病毒、腮病毒、乙腦、寨卡、黃熱病、基孔肯雅熱、克錐蟲病、違禁品濫用、肺炎球菌、軍團菌、化妝品檢測、食品安全檢測等試劑盒以及日本生研細菌分型診斷血清、德國SiFin診斷血清、丹麥SSI診斷血清等產(chǎn)品。

以下是我司出售的部分PCR產(chǎn)品

1.貼壁細胞
1）攞普通潔凈蓋玻片于70%乙醇中浸泡五分鐘或者更長時間，無菌超凈系臺內(nèi)吹干或者用細胞培養(yǎng)PBS或者0.9%NaCl等溶液洗滌三次，而且用細胞培養(yǎng)液洗滌一次。將蓋玻片置于六孔板內(nèi)，種入細胞培養(yǎng)過夜，令約為50%-80%滿。
2）刺激細胞發(fā)生凋亡后，食凈培養(yǎng)液，加0.5ml入墻液，入墻十分鐘或者更長時間（可4℃過夜）。
3）去入墻液，用PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘，食凈液體。洗滌時宜用搖床，或者棍揈數(shù)次。
4）加0.5ml Hoechst 33258染色液，染色五分鐘。都宜用搖床，或者棍揈數(shù)次。
5）用PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘。
6）滴一滴抗熒光淬滅封片液于車玻片上，打上貼有細胞嘅蓋玻片，盡量逃過氣泡。令細胞接觸封片液，切勿搞反。
7）熒光顯微鏡可檢測到呈藍色嘅細胞核。

2.懸浮細胞
1）離心有冇收集細胞樣品于1.5ml離心理內(nèi)，加0.5ml入墻液，緩緩懸起細胞，入墻十分鐘或者更長時間（可4℃過夜）。
2）離心去入墻液，用PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘。洗滌期間呢棍揈。
3）zui后一次離心后吸去部分液體保留約50ml液體，再緩緩懸起細胞，滴加到車玻片上，盡量令細胞分布勻巡。
4）等晾干，令細胞貼喺車玻片上唔易是液體流動。
5）勻巡滴上0.5ml Hoechst 33258染色液，染色五分鐘。用嗍水紙由邊緣吸去液體，微晾干。
6）用PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘。
7）滴一滴抗熒光淬滅封片液于車玻片上，打埋一潔凈嘅蓋玻片，盡量逃過氣泡。
8）H.熒光顯微鏡可檢測到呈藍色嘅細胞核。

3.組織切片
1）常規(guī)包壅切片之后，脫蠟，透明。
2）PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘，食凈液體。洗滌時宜用搖床，或者棍揈數(shù)次?？蓡樟缀谥杏谩?br />3）加0.5ml Hoechst 33258染色液，染色五分鐘。都宜用搖床，或者棍揈。
4）用PBS或者0.9%NaCl洗兩次，次次3分鐘。
5）將切片置于車玻片上，滴一滴抗淬滅封片液，打埋一潔凈嘅蓋玻片，盡量逃過氣泡。
6）熒光顯微鏡可檢測到呈藍色嘅細胞核。

1 .壁の細胞を貼る
いち）をきれいにカバーガラスは70％普通エタノールにご分以上、無菌超純臺で乾かすまたは細胞培養(yǎng)PBSや0.9%NaClなど溶液洗浄で三回、更に細胞培養(yǎng)液洗浄度。カバーグラスを置く六孔板內(nèi)に、種を培養(yǎng)細胞を一晩、約50%-80%満。
に）刺激細胞がアポトーシス後、吸う盡くし培養(yǎng)液、加入0.5ml固定液、固定じゅう分以上（よんしよ℃泊まり）。
さん）に固定液で洗って、PBSや0.9%NaCl 2回、毎回さん分を盡くし、液體。洗濯時はベッドを橫に振るか、手動で何度も揺れます。
よんしよ）を入れて0.5ml Hoechst 33258染色液、染色ご分。ベッドを橫に振るか、手動で何度も揺れます。
ご）で2度や0.9%NaCl PBS洗って、毎回さん分。
ろく）滴一滴抗蛍光焼滅封片液はスライドに蓋を貼って、細胞のカバーガラス避ける気泡。接觸を細胞封片液は、壱弄反。
7）蛍光顕微鏡は青色の細胞核を検出することができる。

2 .浮遊細胞
いち）遠心収集細胞サンプルは1.5ml遠心チューブ內(nèi)に加入し、0.5ml固定液、ゆっくり弔から細胞、固定じゅう分以上（よんしよ℃泊まり）。
に）遠心に固定液で洗って、PBSや0.9%NaCl 2回、毎回さん分。洗濯中は手動で揺れます。
さん）zui終回遠心後をほとんど約50 ml液體液體を保留して、またゆっくり弔から細胞を加え、滴からスライドに、なるべく細胞分布の均一。
4）少し干して、細胞をアップロードに貼る上で、液體の流れに従ってはいけません。
ご）均一垂らす0.5ml Hoechst 33258染色液、染色ご分。水を水にかけて液體を吸い込み、微かに乾かす。
ろく）で2度や0.9%NaCl PBS洗って、毎回さん分。
ななしち）滴一滴抗蛍光焼滅封片液にはスライドカバーに、きれいなカバーガラス避ける気泡。
H .蛍光顕微鏡は青色の細胞核を検出することができます。

3 .組織切片
いち）通常包埋切片後、脫蠟、透明。
2）PBSや0.9%NaCl洗いを2回、毎回3分を盡くし、液體。洗濯時はベッドを橫に振るか、手動で何度も揺れます。六孔板で操作できる。
さん）を入れて0.5ml Hoechst 33258染色液、染色ご分。床を橫に振るか、手動で揺れます。
よんしよ）で2度や0.9%NaCl PBS洗って、毎回さん分。
ご）は切片をスライドに一滴一滴、抗焼滅封片液、カバーにきれいなカバーガラス避ける気泡。
6）蛍光顕微鏡は青色の細胞核を検出することができる。

1. adherent cells
1) take ordinary clean coverslip in 70% ethanol immersion in 5 minutes or longer, sterile laminar drying or cell culture PBS or 0.9%NaCl was washed three times, and then the cell culture was washed again. The coverslips in six well plates, a cell culture that is approximay 50%-80% full overnight.
2) after the cell apoptosis was stimulated, the culture fluid was exhausted and the 0.5ml fixed solution was added to fixed 10 minutes or longer (at 4 degrees centigrade for the night).
3) go to the fixed liquid, wash it two times with PBS or 0.9%NaCl, 3 minutes each time, and suck out the liquid. It is appropriate to use a rocking bed or a manual sloshing several times.
4) add 0.5ml Hoechst 33258 stain and stain for 5 minutes. It is also appropriate to use a rocking bed or a manual sloshing for several times.
5) two times washing with PBS or 0.9%NaCl, 3 minutes each time.
6) a drop of anti fluorescence quenching by liquid to the slide cover, a cell cover, to avoid the bubble. The cell contact mounting liquid, do not get back.
7) the fluorescent microscope can detect the blue nucleus.

2. suspension cell
1) centrifuge collection of cell samples in the 1.5ml centrifuge tube, adding 0.5ml fixed liquid, suspended suspended cells, fixed for 10 minutes or longer time (at 4 degrees centigrade for the night).
2) centrifuge the immobilized liquid and wash it two times with PBS or 0.9%NaCl for 3 minutes each time. Wobble manually during the washing.
3) after the last centrifuge, most of the liquid was absorbed and retained about 50ml liquid, and then suspended cells were slowly suspended and added to the slides to make the cells evenly distributed.
4) dry a little, so that the cells are not easy to flow with the liquid on the slide.
5) uniformly dripping 0.5ml Hoechst 33258 stain for 5 minutes. Suck out the liquid from the edge with water absorbent paper and dry it slightly.
6) two times washing with PBS or 0.9%NaCl, 3 minutes each time.
7) a drop of anti fluorescence quenching liquid mounted on glass slides, covered with a clean glass, try to avoid bubbles.
8) the H. fluorescence microscope can detect the blue nucleus.

3. tissue section
1) after the conventional embedding, the wax is dewaxing and transparent.
2) PBS or 0.9%NaCl wash two times, each time 3 minutes, suck out the liquid. It is appropriate to use a rocking bed or a manual sloshing several times. Operation in six well plate.
3) add 0.5ml Hoechst 33258 stain and stain for 5 minutes. It is also appropriate to use a rocking bed or a manual sloshing.
4) two times washing with PBS or 0.9%NaCl, 3 minutes each time.
5) the slice was placed in a slide, a drop of anti quenching liquid seal, covered with a clean glass, try to avoid bubbles.
6) the fluorescent microscope can detect the blue nucleus.