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技術(shù)文章

ATCC菌種中提取分泌蛋白質(zhì)的方法

閱讀:561          發(fā)布時間:2017-10-19

ATCC菌種從細菌中提取一種可分泌至培養(yǎng)基上清的一種小分子多肽,按照文獻的方法是取細菌上清后用抽提,可反復(fù)做過多次,蛋白總是沒有活性,不知道各位同仁有沒有什么好方法?請指教!
以下參考意見:
參考一:
是有機溶劑,所以但沒有活性。分離這種分泌性蛋白質(zhì),可以先將上清液透析,然后過柱。 

參考二:
蛋白要保持活性,必須維持三維構(gòu)象,而在有機溶劑處理的情況下,蛋白的三維構(gòu)象被破壞,自然就沒有活性了。
如果你的培養(yǎng)液是高鹽濃度的,你可以在得到上清的可溶性蛋白后,加入5-10倍體積的復(fù)性液,以稀釋鹽濃度,防止在下一步透析過程中隨著鹽濃度的降低,造成蛋白析出沉淀而喪失活性,然后用透析袋進行透析,4度以防止蛋白降解,4-6小時,然后冷凍干燥,這樣得到的蛋白就能保持活性了。 

參考三:
你的蛋白鏈內(nèi)有二硫鍵么?結(jié)構(gòu)一般不會太復(fù)雜吧?除非有復(fù)雜的二硫鍵,這么小的蛋白,復(fù)性應(yīng)該不是主要矛盾。
一些小蛋白如果在有機溶劑中發(fā)生的疏水結(jié)構(gòu)的改變是可逆的,而且疏水性較強,那可能就可以抽提,很容易和大部分蛋白分開,不過脂類和脂蛋白肯定去不掉。
但是能溶于蛋白我懷疑很有可能一般的水相條件并不是很好溶,先確定一下這個問題,然后結(jié)合你的測活方法,看看是不是在測活的時候蛋白失活的。 

參考四:
我的蛋白確實是在一般的水相條件不好溶,活性的檢測方法沒什么問題,
抽提后用6M的尿素溶解,加ddH2O 倍比稀釋后檢測活性! 這是文獻上的方法,可總是沒有活性。 不知道是不抽提的方法有問題?抽提法有沒有什么要注意的地方? 

參考五:
培養(yǎng)上清中沒有尿素,可能蛋白濃度不高,但還是要確定一下蛋白能溶么?
或是直接純化前取上清測活看看,到底是不是問題。 

參考六:
我所提的蛋白是不溶于水的,但是在6M、8M的尿素中是可容的
取上清做證實上清是有活性的,所以我覺得是尿素沒有將我所需求的蛋白抽提出來,不知道是不是細節(jié)上出了些問題?各位,有沒有更好的辦法呢? 

參考七:
ATCC菌種沒有把我所需的蛋白抽提出來 
假單胞分離瓊脂    25克    RT,避光    *
鉀測試盒(帶標(biāo)準(zhǔn))    100支/盒    RT    *
鉀    25克    RT    *
甲狀旁腺激素PTH1-84    1公斤        *
甲酰胺    350ku    2~8℃    *
甲酸鈉    1克    保存:-20℃    *
甲酸鉀    1克        *
甲酸銨    100毫克    保存:-20℃    *
甲殼胺    500克        *
甲基紫6B    50毫克        進口/國產(chǎn)
甲基紫    10毫克        *
甲基纖維素    10克        *
甲基叔丁基醚    500克        *
甲基綠    1公斤        *
甲基藍    25KU        *
甲基磺酸乙酯    5克    RT    *
甲基磺酸甲酯    25克        進口/國產(chǎn)
甲基磺酸    1克    2~8℃    *
ATCC菌種

 

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