早在2000年和2011年,Weinberg 和 Hanahan博士提出的腫瘤標(biāo)志性特征中,其中一個(gè)標(biāo)志性特征即為誘導(dǎo)血管新生。腫瘤血管新生是腫瘤發(fā)生發(fā)展、浸潤(rùn)與轉(zhuǎn)移的重要條件。本文將從血管生成概念、腫瘤血管生成的過(guò)程、腫瘤微環(huán)境對(duì)腫瘤血管生成的調(diào)控、腫瘤血管生成的臨床藥物,以及血管生成的13個(gè)研究策略進(jìn)行闡述。
血管生成(Angiogenesis)
血管生成(Angiogenesis)是指從已有的毛細(xì)血管或毛細(xì)血管后靜脈發(fā)展而形成新的血管。新生血管的生長(zhǎng)和成熟是一個(gè)相當(dāng)復(fù)雜和協(xié)調(diào)的過(guò)程,血管的形成與發(fā)展取決于血管生成促進(jìn)因子和抑制因子的動(dòng)態(tài)平衡(如圖1)。
圖1.血管生成平衡
腫瘤血管生成的過(guò)程
腫瘤細(xì)胞持續(xù)分裂和增殖,消耗大量的氧氣和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。當(dāng)實(shí)體瘤的體積小于2mm3時(shí),可以通過(guò)擴(kuò)散獲得氧氣和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。隨著腫瘤組織的逐漸生長(zhǎng),腫瘤需要形成新的血管來(lái)獲取營(yíng)養(yǎng)和氧氣,以確保腫瘤呈指數(shù)增長(zhǎng)(如圖2)。
圖2.經(jīng)典的血管生成開(kāi)關(guān)
腫瘤的血管生成起源于腫瘤中已存在的毛細(xì)血管或毛細(xì)血管后小靜脈。首先,血管周細(xì)胞(綠色)脫落,血管擴(kuò)張;接著內(nèi)皮細(xì)胞(紅色)遷移到血管周?chē)臻g,向腫瘤細(xì)胞或宿主細(xì)胞產(chǎn)生的血管生成刺激方向遷移;然后內(nèi)皮細(xì)胞順著血管生成方向增殖,這一過(guò)程可能由周細(xì)胞引導(dǎo);內(nèi)皮細(xì)胞相互粘附并形成一個(gè)管腔,并伴隨著基底膜的形成和周細(xì)胞的附著。最后,血管芽會(huì)與其他芽融合,建立新的循環(huán)系統(tǒng)(如圖3)。
圖3.新血管形成過(guò)程
腫瘤微環(huán)境對(duì)腫瘤血管生成的調(diào)控
缺氧
實(shí)體腫瘤發(fā)生發(fā)展過(guò)程中,高耗氧量、營(yíng)養(yǎng)缺乏和細(xì)胞中代謝物質(zhì)的積累可能會(huì)產(chǎn)生不適合腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)的缺氧微環(huán)境。在常氧條件下,HIF-1α和HIF-2α被PDH和FIH-1羥基化,并通過(guò)蛋白酶體介導(dǎo)的降解來(lái)降解。在腫瘤的缺氧環(huán)境中,F(xiàn)IH-1和PHDs的失活不能羥基化HIF-1/HIF-2α,降低HIFα-VHL結(jié)合,促進(jìn)HIFα-HIFβ二聚體進(jìn)入細(xì)胞核,激活血管生成相關(guān)基因,并促進(jìn)腫瘤中的血管生成擬態(tài)(如圖4)。
圖4.缺氧在腫瘤血管生成中的作用
血管生成因子
在腫瘤微環(huán)境中,多種細(xì)胞可以分泌促腫瘤血管生成因子,它們?cè)谡{(diào)節(jié)正常和異常血管生成中發(fā)揮重要作用。其中VEGF在腫瘤血管生成中起關(guān)鍵作用。
VEGF通過(guò)與其受體(VEGF R1-3)結(jié)合調(diào)節(jié)腫瘤血管生成,激活細(xì)胞內(nèi)信號(hào)通路(如圖5)。
?增殖
VEGFR可與Grab/Src/Gab1/Shb/PKCγ相互作用,激活RAF/MEK/MAPK和PI3K/AKT信號(hào)通路,促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的增殖。
?遷移和侵襲
VEGFR可以通過(guò)與cdc42、Rho和Rac GTPases結(jié)合,激活PI3K/AKT,促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的遷移和侵襲。
?通透性
VEGFR可以通過(guò)激活NFAT/β-catenin/VE-cadherin和eNOS來(lái)增強(qiáng)血管通透性。
?血管生成擬態(tài)
VEGFR可以通過(guò)上調(diào)EMT相關(guān)基因的表達(dá)來(lái)促進(jìn)EMT誘導(dǎo)的血管生成擬態(tài)。
圖5.VEGF/VEGFR信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路
細(xì)胞因子
腫瘤細(xì)胞在腫瘤微環(huán)境中分泌自分泌和旁分泌細(xì)胞因子。這些細(xì)胞因子在腫瘤的生長(zhǎng)、侵襲和轉(zhuǎn)移中起重要作用。近年研究發(fā)現(xiàn),腫瘤微環(huán)境中的多種細(xì)胞因子在腫瘤血管生成中起重要作用(如圖6)。
圖6.細(xì)胞因子對(duì)腫瘤血管生成的調(diào)控
非編碼核糖核酸
腫瘤血管生成不僅受腫瘤微環(huán)境中血管生成因子和細(xì)胞因子的調(diào)控,還通過(guò)非編碼RNA等多種細(xì)胞內(nèi)成分進(jìn)行調(diào)控。這些分子可以通過(guò)外體或非外體轉(zhuǎn)運(yùn)機(jī)制進(jìn)入腫瘤細(xì)胞(如圖7)。
圖7.非編碼RNA在調(diào)節(jié)腫瘤血管生成中的作用
腫瘤血管生成的臨床藥物
血管生成是腫瘤進(jìn)展的重要組成部分,在腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移中起著關(guān)鍵作用。20世紀(jì)70年代,F(xiàn)olkman教授提出腫瘤的生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移依賴(lài)于血管生成,抑制血管生成可作為腫瘤治療的一種治療策略。近年來(lái),靶向促血管生成基因已成為腫瘤治療和預(yù)防腫瘤擴(kuò)展的研究熱點(diǎn)。目前FDA批準(zhǔn)的抗血管生成藥物根據(jù)靶點(diǎn)的數(shù)量分為兩類(lèi):單靶點(diǎn)抑制劑和多靶點(diǎn)抑制劑。VEGF是抗腫瘤血管生成的重要靶分子(見(jiàn)表1)。
表1
血管生成研究策略
(1)內(nèi)皮細(xì)胞遷移試驗(yàn)
內(nèi)皮細(xì)胞遷移是血管生成的標(biāo)志之一,也是血管生成級(jí)聯(lián)反應(yīng)的早期步驟之一。
傷口愈合試驗(yàn):細(xì)胞培養(yǎng)、傷口愈合試驗(yàn)是表征細(xì)胞遷移活性的基本讀數(shù)之一。血管內(nèi)皮細(xì)胞在培養(yǎng)皿中培養(yǎng)至融合,用刀片/移液管端在孔的中間形成一個(gè)直的間隙。洗滌并去除漂浮的細(xì)胞。將細(xì)胞培養(yǎng)一段時(shí)間后,在顯微鏡下觀察細(xì)胞遷移圖像。對(duì)細(xì)胞遷移的距離進(jìn)行可視化,并通過(guò)image-Pro Plus分析軟件捕獲圖像(如圖8)。
圖8.采用傷口愈合法檢測(cè)HUVECs的遷移情況。
(2)內(nèi)皮細(xì)胞增殖試驗(yàn)
在過(guò)去的幾十年里,已經(jīng)發(fā)展出了許多不同的解決細(xì)胞增殖的方法。一般來(lái)說(shuō),這些方法包括細(xì)胞數(shù)量的評(píng)估、通過(guò)摻入標(biāo)記的核苷酸類(lèi)似物來(lái)檢測(cè)DNA合成、DNA含量的測(cè)量、增殖標(biāo)記物的檢測(cè)和代謝分析(如圖9)。
?細(xì)胞計(jì)數(shù):自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)器或血細(xì)胞計(jì)數(shù)器
?DNA標(biāo)記:3H-thymidine、BrdU、edu、PI、DAPI、Fucci
?增殖標(biāo)志物:PH3、PCNA、Ki67
?代謝分析:MTT測(cè)定
圖9.內(nèi)皮細(xì)胞增殖試驗(yàn)。a.在常規(guī)的96孔板上生長(zhǎng)的HUVEC的相位對(duì)比度圖像(左)和二值化圖像。b.MTT檢測(cè)的例子,顏色強(qiáng)度與細(xì)胞數(shù)量相關(guān)。c. PI檢測(cè)HUVECDNA染色,平板細(xì)胞儀測(cè)量。d. HUVEC用sunitinib處理后的細(xì)胞活力,發(fā)光法測(cè)定。
(3)血管形態(tài)發(fā)生的3D模型
通過(guò)血管發(fā)生或血管生成,血管網(wǎng)絡(luò)的出現(xiàn)需要細(xì)胞形成穩(wěn)定的3D管,這一過(guò)程涉及這些細(xì)胞的分化、遷移、增殖、聚集和重排,形成索,然后形成管腔。綜上所述,這個(gè)過(guò)程被稱(chēng)為血管形態(tài)發(fā)生。隨后,EC招募血管周?chē)拈g質(zhì)細(xì)胞(周細(xì)胞)來(lái)穩(wěn)定這個(gè)新形成的網(wǎng)絡(luò),并減少血液灌注時(shí)的滲漏。血管形態(tài)發(fā)生的三維分析如圖10所示。
?纖維蛋白珠測(cè)定
?膠原蛋白測(cè)定
?視網(wǎng)膜外植體測(cè)定
?血管化的微器官平臺(tái)(VMO)
圖10.血管形態(tài)發(fā)生的三維分析。a. I型膠原蛋白和EC包覆的細(xì)胞珠嵌入在3D纖維蛋白凝膠基質(zhì)中,以測(cè)量EC的發(fā)芽和管腔形成。b. 相差顯微鏡觀察EC發(fā)芽和管腔形成。c. EC管的形成可以通過(guò)將EC嵌入I型膠原基質(zhì)中來(lái)測(cè)量。d.一旦形成,這些管腔可以通過(guò)甲苯胺藍(lán)染色和亮視野顯微鏡觀察到。e.將出生后小鼠的完整的解剖視網(wǎng)膜包埋在I型膠原-基質(zhì)膠混合基質(zhì)中,并在促血管生成培養(yǎng)基中培養(yǎng),以刺激EC發(fā)芽。f.相差顯微鏡觀察小鼠視網(wǎng)膜血管形態(tài)發(fā)生。g.VMO平臺(tái)利用了“小動(dòng)脈"(高壓)和“小靜脈"(低壓)微流控通道,這些通道通過(guò)在介入的組織室內(nèi)通過(guò)血管生成形成的活微血管網(wǎng)絡(luò)連接。h. 用70kDa的FITC-dextran(綠色)灌注,可以測(cè)量形成的微血管系統(tǒng)(EC,紅色)的滲漏。
(4)主動(dòng)脈環(huán)試驗(yàn)
大鼠或小鼠主動(dòng)脈外植體在ECM凝膠中時(shí),具有體外發(fā)芽和形成分支微血管的能力(圖11)。該系統(tǒng)中的血管生成是由主動(dòng)脈釋放的內(nèi)源性生長(zhǎng)因子及其在解剖過(guò)程中響應(yīng)損傷時(shí)的生長(zhǎng)所驅(qū)動(dòng)的。主動(dòng)脈壁的這種特性在20世紀(jì)80年代早期被描述,并導(dǎo)致了主動(dòng)脈環(huán)檢測(cè)的發(fā)展,現(xiàn)在被廣泛用于研究血管生成的基本機(jī)制和測(cè)試促血管生成或抗血管生成化合物的療效。
圖11.主動(dòng)脈環(huán)實(shí)驗(yàn)。a.第6天拍攝的大鼠主動(dòng)脈無(wú)血清膠原凝膠培養(yǎng)(星號(hào))(箭頭標(biāo)記的微血管)。b.用VEGF(5ng/ml)處理的主動(dòng)脈培養(yǎng)顯示微血管數(shù)量增加(第6天)。c.主動(dòng)脈來(lái)源的微血管(E)、未閉腔(L)和周?chē)芗?xì)胞(P)的電鏡圖;內(nèi)皮緊密連接用箭頭表示。d.由內(nèi)皮細(xì)胞的內(nèi)核和周?chē)闹芗?xì)胞組成的微血管的相位對(duì)比顯微圖(白色箭頭)。e.NG2免疫過(guò)氧化物酶染色突出顯示周細(xì)胞。f.主動(dòng)脈來(lái)源的巨噬細(xì)胞的免疫熒光圖像;在背景中可見(jiàn)一個(gè)植物凝集素IB4標(biāo)記的內(nèi)皮芽。g.內(nèi)皮細(xì)胞(IB4)和周細(xì)胞(αSMA)雙染色的微血管共聚焦圖像。
(5)腫瘤微血管密度及腫瘤中的組織病理學(xué)生長(zhǎng)模式
微血管密度(MVD)常被認(rèn)為是腫瘤血管生成的替代標(biāo)志物。組織病理學(xué)生長(zhǎng)模式(HGPs)是根據(jù)腫瘤與周?chē)=M織界面處的形態(tài)學(xué)特征來(lái)定義的。
非血管生成腫瘤的流行及其對(duì)抗VEGF治療的耐藥性需要識(shí)別一種準(zhǔn)確反映這種類(lèi)型腫瘤生長(zhǎng)的生物標(biāo)志物。HGPs是一個(gè)很好的候選生物標(biāo)志物。用泛內(nèi)皮抗體免疫染色的腫瘤切片上的血管模式和使用標(biāo)記內(nèi)皮細(xì)胞參與新生血管生成的抗體是其他潛在的區(qū)分非血管生成和血管生成腫瘤的組織病理學(xué)方法。通過(guò)CD31對(duì)正常肝(a)組織、結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移(b)和(c)組織進(jìn)行染色,通過(guò)不同方法計(jì)算微血管密度模式,發(fā)現(xiàn)與血管生成、結(jié)締組織增生的肝轉(zhuǎn)移形成對(duì)比,后者顯示的血管熱點(diǎn)數(shù)量明顯高于正常肝組織和非血管生成的肝組織(如圖12)。
圖12.微血管密度和組織病理學(xué)生長(zhǎng)模式a.正常肝臟中血管模式的無(wú)監(jiān)督空間建模顯示,每個(gè)血管輪廓的簇?cái)?shù)量很低。b.具有替代生長(zhǎng)模式的結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移患者的血管模式的無(wú)監(jiān)督空間建模顯示,每個(gè)血管輪廓的簇?cái)?shù)量較低。c.對(duì)具有結(jié)締組織生長(zhǎng)模式的結(jié)直腸癌肝轉(zhuǎn)移中的血管模式的無(wú)監(jiān)督空間建模顯示,每個(gè)血管輪廓中都有大量的簇。a-c.相同的顏色表示相同的微血管密度模式。d.結(jié)締組織生長(zhǎng)模式、替代生長(zhǎng)模式和正常肝臟的標(biāo)準(zhǔn)化血管物體簇的數(shù)量的Tukey箱形圖。
(6)腸套疊血管生成試驗(yàn)
血管生成是血管的從頭形成,可以跟隨發(fā)芽或非發(fā)芽的過(guò)程。一個(gè)重要的非發(fā)芽機(jī)制是腸套疊(自身生長(zhǎng);也稱(chēng)為血管分裂)。
血管鑄造已被廣泛用于三維顯示腸套疊血管生成。該方法是基于創(chuàng)建一個(gè)微血管系統(tǒng)的血管復(fù)制品。采用甲基丙烯酸甲酯或PU4ii作為鑄造介質(zhì),灌注后幾小時(shí),切除器官,轉(zhuǎn)移到15%的KOH中2-4周,以溶解組織。洗滌后,鑄件在一系列不斷增加的乙醇濃度中脫水,并在真空干燥器中干燥,并用掃描電鏡檢測(cè)(如圖13)。
圖13.腸套疊血管生成—方法上的挑戰(zhàn)。a.掃描電鏡觀察血管的管腔(星號(hào))的形成。b.對(duì)再生斑馬魚(yú)鰭血管系統(tǒng)的動(dòng)態(tài)體內(nèi)觀察顯示了一個(gè)新形成的柱(矩形)。c.來(lái)自b圖的三維重建模型。d.透射電鏡顯微圖顯示了在超微結(jié)構(gòu)水平上的腔內(nèi)組織柱(b,c中的矩形)。黑色星號(hào)表示柱狀細(xì)胞的核心,箭頭表示內(nèi)皮細(xì)胞(EC)之間的細(xì)胞-細(xì)胞接觸。
(7)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子c (VEGFC)的體內(nèi)萌芽淋巴管生成實(shí)驗(yàn)及AAV介導(dǎo)的基因轉(zhuǎn)移
淋巴系統(tǒng)在體內(nèi)維持組織液穩(wěn)態(tài)、脂質(zhì)吸收和免疫細(xì)胞運(yùn)輸中起著關(guān)鍵作用。指導(dǎo)淋巴細(xì)胞生長(zhǎng)的最重要的受體信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)是VEGF-C/VEGFR-3系統(tǒng)。通過(guò)轉(zhuǎn)基因過(guò)表達(dá)或病毒基因傳遞系統(tǒng)提高VEGF-C的組織濃度會(huì)導(dǎo)致淋巴過(guò)度生長(zhǎng)。研究淋巴管生成的技術(shù)有耳海綿試驗(yàn)和病毒基因傳遞技術(shù)(如圖14).
圖14.體內(nèi)淋巴管和血管的生長(zhǎng)。a-c.淋巴管生成的明膠海綿的制備。d-f.AAV的制備和骨骼肌的轉(zhuǎn)染。
(8)人內(nèi)皮細(xì)胞和周細(xì)胞無(wú)血清3D共培養(yǎng)
該分析模型的主要好處和優(yōu)勢(shì)在于其高再現(xiàn)性和高重復(fù)數(shù),因?yàn)樗窃诎朊娣e96孔板中進(jìn)行的。周細(xì)胞招募到EC管的結(jié)果可以通過(guò)檢查基底膜沉積(通過(guò)免疫熒光染色或透射電子顯微鏡),或通過(guò)測(cè)量毛細(xì)管的寬度和長(zhǎng)度來(lái)揭示。最后,實(shí)時(shí)視頻分析可以用于監(jiān)測(cè)周細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞的運(yùn)動(dòng),因?yàn)樗鼈冊(cè)谌S基質(zhì)中與異常招募的周細(xì)胞共同組裝形成管狀網(wǎng)絡(luò)(如圖15)。
圖15.人內(nèi)皮細(xì)胞-周細(xì)胞管與3D膠原基質(zhì)共組裝的無(wú)血清培養(yǎng)體系。120h固定的培養(yǎng)物用CD31、層粘連蛋白(LM)和纖維連接蛋白(FN)的抗體進(jìn)行免疫染色,并用共聚焦顯微鏡成像或透射電鏡檢查。箭頭表示毛細(xì)血管基底膜。L表示管腔,Nuc表示細(xì)胞核標(biāo)記。
(9)內(nèi)皮細(xì)胞共培養(yǎng)球體實(shí)驗(yàn)
體外2D單層細(xì)胞培養(yǎng)及其向臨床環(huán)境的轉(zhuǎn)化/延伸的研究有其局限性,因?yàn)樗鼈儾荒苣M體內(nèi)環(huán)境中的營(yíng)養(yǎng)和氧梯度。臨床前3D共培養(yǎng)球體分析有助于細(xì)胞內(nèi)/細(xì)胞間串?dāng)_模擬體內(nèi)血管結(jié)構(gòu),例如管腔形成和極化,并且在兩種或多種細(xì)胞類(lèi)型具有自然粘附和分層特性的情況下,對(duì)于探索這些相互作用特別有價(jià)值。
多細(xì)胞三維球狀體可以通過(guò)多種方法生成,包括:(1)使用(超)低結(jié)合板自發(fā)形成球狀體;(2)“吊墜"技術(shù);(3)懸浮培養(yǎng)(例如,通過(guò)旋轉(zhuǎn)燒瓶或生物反應(yīng)器);(4)基于支架的模型(例如,水凝膠);(5)磁力懸浮技術(shù)。其中自發(fā)球體形成和懸滴法的方法是比較經(jīng)濟(jì)有效的(如圖16)。
圖16.EC共培養(yǎng)球體測(cè)定。a.懸滴球狀體生長(zhǎng)試驗(yàn)隨時(shí)間的變化的過(guò)程概述。在開(kāi)始共培養(yǎng)之前,腫瘤細(xì)胞(綠色)先建立自己的微球狀體,然后在72小時(shí)后引入內(nèi)皮細(xì)胞(紅色),并在14天內(nèi)監(jiān)測(cè)它們的摻入情況。7天后,腫瘤球細(xì)胞球狀體可以通過(guò)各種技術(shù)進(jìn)行定量和定性評(píng)估,如c(熒光)顯微鏡、組織學(xué)、功能分析或植入體內(nèi)。
(10)內(nèi)皮細(xì)胞代謝實(shí)驗(yàn)
大多數(shù)內(nèi)皮細(xì)胞會(huì)保持?jǐn)?shù)年的靜息狀態(tài),但在暴露于促血管生成刺激(如VEGF)時(shí),它們可以在健康和疾病狀態(tài)下迅速轉(zhuǎn)換為增殖和遷移狀態(tài)。在這種轉(zhuǎn)換的基礎(chǔ)上,是一個(gè)受到嚴(yán)格調(diào)控的代謝網(wǎng)絡(luò),為內(nèi)皮細(xì)胞做出相應(yīng)反應(yīng)提供必要的能量和構(gòu)建模塊。目前已建立的監(jiān)測(cè)EC代謝活性的方法有:(1)示蹤劑代謝組學(xué),(2)基于放射性示蹤劑的代謝測(cè)定,(3)通過(guò)海馬XF分析儀測(cè)量細(xì)胞外酸化率和線(xiàn)粒體呼吸。如圖17。
圖17.用放射性示蹤劑和海馬XF分析儀測(cè)定EC代謝。a.用葡萄糖測(cè)量糖酵解通量的示意圖。b.改良糖酵解應(yīng)力試驗(yàn)的示意圖。c.改進(jìn)的海馬細(xì)胞線(xiàn)粒體應(yīng)力試驗(yàn)示意圖。
(11)微流控分析
微流控細(xì)胞培養(yǎng)系統(tǒng)的使用改變了我們研究和處理活細(xì)胞的方式,許多研究人員利用這些系統(tǒng)來(lái)推進(jìn)和完善我們對(duì)血管生成和微血管功能的理解。用于研究血管生成的首端微流控細(xì)胞培養(yǎng)模型已經(jīng)成功地結(jié)合了血管功能定量分析、體外流動(dòng)室、微制造技術(shù)和3D組織支架的原理。因此,微流控方法已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了很好地控制化學(xué)梯度、流體流動(dòng)、基質(zhì)組成和細(xì)胞-細(xì)胞相互作用水平,所有這些都可以整合起來(lái),為研究血管生成提供生理學(xué)相關(guān)的背景(如圖18)。
圖18.分析血管生成的PDMS微流控裝置。
(12)流式細(xì)胞術(shù)和細(xì)胞分選分析
癌細(xì)胞改變?cè)l(fā)部位的微環(huán)境,有利于腫瘤的生長(zhǎng)和擴(kuò)散。腫瘤微環(huán)境(TME)由許多不同類(lèi)型的細(xì)胞組成。腫瘤血管生成通過(guò)提供氧氣和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)、細(xì)胞因子和生長(zhǎng)因子(血管分泌效應(yīng)),以及傾向轉(zhuǎn)移的逃逸途徑,促進(jìn)局部腫瘤的生長(zhǎng)和侵襲。在對(duì)腫瘤產(chǎn)生的因子的反應(yīng)中,被招募的CD11b+髓系細(xì)胞向另一種激活狀態(tài)(M2)極化,而不是經(jīng)典的激活狀態(tài)(M1)。M2極化的CD11b+細(xì)胞通過(guò)釋放生長(zhǎng)和運(yùn)動(dòng)因子,包括VEGF、FGF、腫瘤壞死因子(TNF)、血小板源性生長(zhǎng)因子(PDGF)和趨化因子,促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng)、侵襲、轉(zhuǎn)移和血管生成。
傳統(tǒng)上,TME是通過(guò)組織切片的免疫組織學(xué)染色來(lái)分析。雖然組織學(xué)技術(shù)在渲染組織形態(tài)方面具有優(yōu)勢(shì),但它們也有一些相關(guān)的局限性:(1)檢測(cè)指標(biāo)有限;(2)染色細(xì)胞無(wú)法用于進(jìn)一步分析;(3)對(duì)于大量樣本,費(fèi)時(shí)費(fèi)力;(4)無(wú)法對(duì)細(xì)胞數(shù)量和染色信號(hào)強(qiáng)度精確定量。而流式細(xì)胞術(shù)可以規(guī)避組織染色的局限性。如圖19所示。
圖19.流式細(xì)胞術(shù)和細(xì)胞分選實(shí)驗(yàn)的代表性流程圖。
(13)雞胚胎的尿囊絨膜實(shí)驗(yàn)(CAM)
盡管Rous 和 Murphy在1911報(bào)道了雞絨毛尿囊膜(CAM)分析法,以研究哺乳動(dòng)物腫瘤的異種生長(zhǎng),雞胚胎本身一直是從亞里士多德開(kāi)始的科學(xué)研究的目標(biāo)。由于受精卵很容易獲得,胚胎也很容易可視化,雞胚胎成為實(shí)驗(yàn)生物學(xué)家最喜歡的目標(biāo)。由于這些*的性能,CAM不僅廣泛應(yīng)用于直接的血管生物學(xué)研究,還廣泛應(yīng)用于生物工程、化妝品檢測(cè)、移植生物學(xué)、藥物和疫苗開(kāi)發(fā)、血管閉塞療法或癌癥研究等。雞胚的絨毛膜尿囊膜實(shí)驗(yàn)如圖20所示。
圖20.雞胚的絨毛膜尿囊膜試驗(yàn)(CAM)。
更多血管生成相關(guān)實(shí)驗(yàn),請(qǐng)參考文獻(xiàn)“Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays"。
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貨號(hào) | 品名 |
相關(guān)抗體 | |
abs145422 | Rabbit Anti-VEGF Receptor2 Monoclonal Antibody |
abs130002 | Phospho-Akt(Ser473) Rabbit Polyclonal Antibody |
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abs131122 | Phospho-p38 MAPK (Thr180/Tyr182) Rabbit Polyclonal Antibody |
abs130614 | Phospho-ERK1/2 (Thr202/Tyr204) Rabbit Polyclonal Antibody |
abs128832 | Rabbit Anti-phospho-ERK1/2 (Thr202 + Tyr204) antibody |
abs139910 | Phospho-TGF beta Receptor III (Thr842) Rabbit Polyclonal Antibody |
abs153787 | Rabbit anti-VEGF Receptor 1 Polyclonal Antibody |
abs133068 | Rabbit anti-VEGFR3 Polyclonal Antibody |
細(xì)胞因子 | |
abs04204 | Recombinant Human Transforming Growth Factor β-1/TGFB1 |
abs04501 | Recombinant Mouse Transforming Growth Factor-β Receptor Type II/TGFBR2 (C-6His) |
abs04232 | Recombinant Human Tumor Necrosis Factor α/TNFα |
abs04259 | Recombinant Mouse Tumor Necrosis Factor/TNFα |
abs04086 | Recombinant Human Interleukin-1β/IL-1β |
abs04044 | Recombinant Human Interleukin-6/IL-6 |
abs00810 | Recombinant Human IL-8, 72a.a./CXCL8 |
abs04069 | Recombinant Human Interleukin-25/IL-25 (C-6His) |
abs04187 | Recombinant Human VEGF-A/VEGF165 |
abs04190 | Recombinant Human Platelet-Derived Growth Factor BB/PDGF-BB |
abs04200 | Recombinant Human Fibroblast Growth Factor 2/FGF-2/FGFb (Pro143-Ser288) |
abs04176 | Recombinant Human Epidermal Growth Factor/EGF |
abs04720 | Recombinant Mouse GM-CSF/CSF2 |
abs01235 | Recombinant Human TIMP-2 |
細(xì)胞增殖檢測(cè)試劑盒 | |
abs50010 | MTT細(xì)胞增殖及細(xì)胞毒性檢測(cè)試劑盒 |
abs50003 | CCK-8試劑盒 |
ELISA檢測(cè)試劑盒 | |
abs510008-96T | Human VEGF ELISA Kit |
abs510032-96T | Human TGF-beta 1 ELISA Kit |
abs510010-96T | Human MMP-9 ELISA Kit |
參考文獻(xiàn):
[1]Bergers G , Benjamin L E . Tumorigenesis and the angiogenic switch[J]. Nature Reviews Cancer.
[2]Domenico, Ribatti, Angelo, et al. The role of microenvironment in tumor angiogenesis[J]. Genes & Nutrition, 2008, 3(1):29-34.
[3]Su D . Up-regulation of MiR-145-5p promotes the growth and migration in LPS-treated HUVECs through inducing macrophage polarization to M2[J]. Journal of Receptor and Signal Transduction Research, 2020(3):1-8.
[4]Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays[J]. Angiogenesis, 2018, 21(3):1-108.
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