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團(tuán)聚細(xì)胞計(jì)數(shù)的應(yīng)用解決方案:Cell Type參數(shù)優(yōu)化
這些實(shí)驗(yàn)中使用的是FreeStyle 293-F 細(xì)胞(Thermo Fisher,Cat.編號(hào):R79007)。將 HEK 懸浮細(xì)胞在含有FreeStyle 293(30 mL)表達(dá)培養(yǎng)基的 50 mL Falcon 管中培養(yǎng),每 3-4 天傳代培養(yǎng)一次,接種細(xì)胞密度為 0.2x106 個(gè)細(xì)胞/mL。它們?cè)?37°C、250 rpm 和 5% CO2 濃度下孵育。
使用培養(yǎng) 4 天的細(xì)胞樣品進(jìn)行初始測(cè)量,在Normal模式下使用Mammalian Cell Type重復(fù)測(cè)量 5 次。然后結(jié)果被導(dǎo)出(每 10 張圖像照片保存一張)并離線重新分析。為了重新分析,基于默認(rèn)的Mammalian Cell Type創(chuàng)建了另外兩個(gè)Cell Type,但將去團(tuán)聚度設(shè)置為L(zhǎng)ow和High。為了研究不同去團(tuán)聚度設(shè)置的有效性,比較了這三種Cell Type總細(xì)胞密度和活細(xì)胞密度以及活率的結(jié)果。
之后,開始用 HEK 293-F 細(xì)胞進(jìn)行新鮮培養(yǎng),并在第 0、1、2、3 和 6 天取樣。然后,測(cè)試了其他采樣參數(shù),因?yàn)樗腥掌诘臉悠范加媚J(rèn)的Mammalian Cell Type,以及將Aspiration和Mixing Cycles增加到10次的Cell Type。在所有采樣日,將細(xì)胞培養(yǎng)液用 5 mL 移液器混合 2 次,然后將 5 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到 15 mL Facon管中。接著,用 1000 μL 移液器將樣品再混合 3 次,再將 3 x 500 μL 細(xì)胞樣品轉(zhuǎn)移到 Vi-CELL XR 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀樣品管中,以及將 6 x 200 μL 細(xì)胞樣品轉(zhuǎn)移到 Vi-CELL BLU 96 孔板中。Vi-CELL XR 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上的樣品,使用圖 1 所示的Cell Type分析;在Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上,兩種Cell Type交替進(jìn)行。然后,將 2 x 10 μL 細(xì)胞樣品與臺(tái)盼藍(lán) 1:1 混合并轉(zhuǎn)移到一次性血球計(jì)數(shù)板中手動(dòng)計(jì)數(shù)。
圖1:Vi-CELL XR上的分析設(shè)置,選擇的設(shè)置類似于Vi-CELL BLU上的設(shè)置
然后,在Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上運(yùn)行的樣品以High Decluster degree重新分析,在 Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上共生成4種不同的細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果,以與 Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀的結(jié)果和手動(dòng)計(jì)數(shù)結(jié)果進(jìn)行比較。
表1. Vi-CELL BLU分析HEK 293-F的Cell Type,Mammalian Cell Type作為其他3個(gè)Cell Types的模板。
在三個(gè)Decluster degree下(Low,Normal和High)得到的平均總細(xì)胞密度和活細(xì)胞密度(分別為 TCD 和 VCD)和活率進(jìn)行了比較(圖2)。更高的去團(tuán)聚度使得TCD 和 VCD 值均明顯增加(R2 > 0.98)。然而,使用較低或較高的Decluster degree時(shí),細(xì)胞活率卻并不顯著增加或減少。
圖2:Vi-CELL BLU使用不同Decluster degree設(shè)置分析HEK 293-F的結(jié)果。平均總細(xì)胞和活細(xì)胞密度顯示在左軸上,平均活率顯示在右軸上。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。
表 2 中的圖像顯示了Decluster degree如何影響樣品分析,從而影響細(xì)胞濃度結(jié)果。所選圖像是圖2中其中一個(gè)測(cè)量樣品的圖像(部分),并且很好地表示了細(xì)胞樣品的狀態(tài)。如前所述,HEK 293 F細(xì)胞傾向于形成團(tuán)聚體,而這些團(tuán)聚體中的細(xì)胞可能難以計(jì)數(shù)準(zhǔn)確。當(dāng) Decluster degree 設(shè)置為 low 時(shí),某些團(tuán)聚將不再被解聚,并且標(biāo)有藍(lán)色圓圈,表示Vi-CELL軟件錯(cuò)誤地將它們識(shí)別為單個(gè)顆粒,因?yàn)槠涑叽巛^大,根據(jù)所選Cell Type參數(shù)未歸為一個(gè)細(xì)胞。通過更高的去團(tuán)聚度,可以分析更多這些團(tuán)聚細(xì)胞,從而產(chǎn)生單個(gè)團(tuán)聚標(biāo)記為Normal Decluster degree,所有團(tuán)聚細(xì)胞均在High declustering下進(jìn)行分析。更高的Decluster degree設(shè)置會(huì)導(dǎo)致識(shí)別出額外的細(xì)胞,可能導(dǎo)致人為地提高細(xì)胞密度,因?yàn)閱蝹€(gè)細(xì)胞可能(幾乎)分裂成兩個(gè)或多個(gè)顆粒。這些顆粒是被忽略還是算作活細(xì)胞或死細(xì)胞取決于其他Cell Type參數(shù),例如大小、圓度和亮度。因此,優(yōu)化Cell Type設(shè)置對(duì)于獲得準(zhǔn)確的結(jié)果很重要。
表2. 不同Decluster degree設(shè)置的分析結(jié)果,隨著Declustering增加,更多的細(xì)胞團(tuán)聚被分析,細(xì)胞團(tuán)聚體中更多的細(xì)胞被識(shí)別。
請(qǐng)注意,Cluster count不受Decluster degree的影響。對(duì)于“Low"和“High"設(shè)置,每次測(cè)量平均計(jì)數(shù) 1.6 個(gè)Clusters。Cluster count指示在樣本中發(fā)現(xiàn)了多少個(gè)過大的細(xì)胞團(tuán)聚體。這些Cluster用紅色框標(biāo)記,并且無(wú)論Decluster degree如何,都全部排除在分析之外。因此,高的Cluster count是大細(xì)胞團(tuán)聚體的良好指示,需要在培養(yǎng)處理或樣品制備方面進(jìn)行額外優(yōu)化,以獲得準(zhǔn)確的細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果。
最終,在優(yōu)化Cell Type設(shè)置時(shí),Vi-CELL BLU 軟件還提供了增加Aspiration和Mixing cycles的可能性。增加Aspiration和Mixing的影響評(píng)估,是使用默認(rèn)的Mammalian Cell Type,將其中的Aspiration和Mixing cycles都設(shè)為10,每天對(duì) HEK 293-F 細(xì)胞樣品進(jìn)行采樣,并一式三份測(cè)定細(xì)胞密度。之后,使用表1所述的High Decluster degree重新分析所有測(cè)量值。將結(jié)果與使用Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀及手動(dòng)計(jì)數(shù)獲得的值進(jìn)行比較(圖3)。
圖3: Vi-CELL BLU用4種不同Cell Types檢測(cè)的總細(xì)胞密度和活率(藍(lán)-灰色),Vi-CELL XR(紅色)和手動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)(綠色)。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。
圖 3 顯示了 Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀、血球計(jì)數(shù)板、Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀(使用默認(rèn)Mammalian Cell Type)測(cè)試6天得到的細(xì)胞密度和活率具有可比性。此外,Mixing增加和/或High declustering的Cell Type會(huì)導(dǎo)致更高的細(xì)胞密度。在第3天,測(cè)量的平均 TCD 介于 2.81 – 4.12 百萬(wàn)個(gè)細(xì)胞/mL 之間,分別使用默認(rèn)的 Mammalian 和 Mammalian A10M10 High decluster。因此,與默認(rèn)設(shè)置相比,更改兩個(gè)參數(shù)后結(jié)果增加了 47%。
然而,在第6天存活率下降到~70%,而且手動(dòng)計(jì)數(shù)的TCD明顯比自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)儀的TCD更高。表 3 中的圖像(通過顯微鏡顯示 Neubauer 分析室)為這種偏差提供了清晰地解釋,因?yàn)榕c第 3 天相比,第 6 天的細(xì)胞樣品中顯示有更多的細(xì)胞聚集體。這些細(xì)胞聚集體很難計(jì)數(shù),在分析過程中大的團(tuán)聚細(xì)胞將被全部忽略。
表3: 第3和第6天HEK 293-F細(xì)胞計(jì)數(shù)顯微鏡下的照片。第6天可以看到更多的細(xì)胞團(tuán)聚體,細(xì)胞活率降低。
專注于培養(yǎng)的前 3 天(圖 4)可以進(jìn)一步研究不同的Cell Type設(shè)置如何影響計(jì)數(shù)結(jié)果。第 3 天血球計(jì)數(shù)板圖像(表 3)顯示,到目前為止,細(xì)胞主要以小聚集體或單細(xì)胞形式生長(zhǎng)。仔細(xì)觀察Cluster count可以發(fā)現(xiàn),Clusters的平均數(shù)量從第 1 天的 0.7 個(gè)增加到第 2 天的 3.7 個(gè)和第 3 天的 8.7 個(gè)。同時(shí),更高的Mixing和Aspiration cycles的效果似乎有所增加,第 1 天的 TCD 增加了 4%,而第 2 天和第 3 天分別增加了 17% 和 25%。在Mammalian A10M10 High decluster設(shè)置下的結(jié)果一直是最高濃度。
圖4: HEK培養(yǎng)的前3天。在 Vi-CELL BLU 上以藍(lán)灰色以及 Vi-CELL XR(紅色)和手動(dòng)計(jì)數(shù)(綠色)測(cè)定四種不同的細(xì)胞密度和活率。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。
總之,每日采樣結(jié)果進(jìn)一步證明了正確Cell Type設(shè)置的重要性。僅改變?nèi)齻€(gè)參數(shù)就導(dǎo)致 TCD 增加 47%。測(cè)量團(tuán)聚的HEK細(xì)胞時(shí),調(diào)整Decluster degree和Mixing/Aspiration cycles可以得到更高的TCD。然而,第6天的數(shù)據(jù)(圖3)表明,應(yīng)避免過度團(tuán)聚的細(xì)胞樣品,因?yàn)榕c手動(dòng)計(jì)數(shù)相比,所有Cell Type的結(jié)果都明顯較低。
● 參考資料:
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4. ISO 20391-1. Biotechnology — Cell counting — Part 1: General guidance on cell counting methods. s.l. : ISO/TC 276, Biotechnology, 2018-01. First edition. ISO 20391-1:2018(E). 5. Cluster Count Analysis and Sample Preparation Considerations for the Vi-CELL BLU Cell Viability Analyzer. Wu, Andrew. s.l. : Beckman Coulter Life Sciences, 2023. 2023-GBL-EN-101754.
5. Cluster Count Analysis and Sample Preparation Considerations for the Vi-CELL BLU Cell Viability Analyzer. Wu, Andrew. s.l. : Beckman Coulter Life Sciences, 2023. 2023-GBL-EN-101754.