TUNEL原位檢測試劑盒（石蠟切片）（FITC標記POD法）（TdT酶介導的原位末端標記dUTP檢測試劑盒）（DNA片段化檢測試劑盒）
Cat number：KGA
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Expire date：
For Research Use Only
凱基TUNEL細胞凋亡原位檢測試劑盒
（FITC標記POD法,石蠟切片）
使用說明書
Cat：KGA7025，7035，7045
（20，50，100Tests）
目 錄
一 TUNEL檢測原理
二試劑盒組分
三檢測樣本的預處理
1 常規(guī)石蠟切片樣本的預處理
2 其它難于處理的組織切片的預處理
3陽性對照及陰性對照的準備
四 標記及顯色反應
五 常見問題的原因及*解決方案
一、TUNEL試劑盒說明
凱基TUNEL細胞凋亡檢測試劑盒（FITC標記POD法）是用來檢測細胞在凋亡過程中細胞核DNA的斷裂情況，其原理是熒光素（fluorescein）標記的dUTP在脫氧核糖核苷酸末端轉移酶（TdT Enzyme）的作用下,可以連接到凋亡細胞中斷裂的DNA的3‘－OH末端，可用熒光顯微鏡檢測；熒光素亦可被抗熒光素抗體（anti-fluorescein antibody）標記,，在辣根過氧化酶底物二氨基聯(lián)苯胺（DAB）的存在下，產(chǎn)生很強的顏色反應（呈棕色），特異準確地定位正在凋亡的細胞，因而在普通光學顯微鏡下即可觀察和計數(shù)凋亡細胞。由于正常的或正在增殖的細胞幾乎沒有DNA的斷裂，因而沒有3'-OH形成，很少能夠被標記或染色。本試劑盒適用于組織樣本（石蠟切片）的凋亡原位檢測。
本試劑盒特點
●操作簡便：使用Ready-to-Use型試劑，并配有Proteinase K和DAB。
● 高靈敏度：可以單一檢出初期的凋亡細胞。
● 高特異性：能特異性染色凋亡細胞。
●快速操作：整體操作約需3小時。
● 方便觀察：可使用熒光顯微鏡觀察實驗結果，亦可在信號轉換后使用光學顯微鏡觀察實驗結果。
● 高正確性：有陽性對照片的制備方法，可以確認試劑盒的有效性
二、TUNEL試劑盒組分
| 組 份 | Cat: KGA-7025 20 assays | Cat: KGA-7035 50 assays | Cat: KGA-7045 100 assays | 儲存條件 |
| Equilibration Buffer | 1.0 mL | 2.5 mL | 5.0 mL | -20℃ |
| FITC-12-dUTP | 20μL | 50μL | 100μL | -20℃ |
| TdT Enzyme | 80μL | 200μL | 400μL | -20℃ |
| 50×Proteinase K | 40μL | 100μL | 200μL | -20℃ |
| anti-fluorescein antibody | 200μL | 500μL | 1000μL | -20℃ |
| DAB | 2mg | 5mg | 10 mg | -20℃ |
注意事項
1．使用前請認真閱讀本說明書，提前準備好相關試劑。
2．因本試劑盒中組分均為微量，使用前請離心集液。
3．為避免試驗誤差、降低試劑的損耗，建議使用精密度高的進口微量移液槍及槍頭。
4．TdT 酶反應液在使用前根椐樣本數(shù)量集中配制，再分別滴加于各樣本片上，避免每個樣本單獨配制而產(chǎn)生的試劑損耗。
5．另因DAB為固體粉末，使用前加入適量PBS溶解，配制成20×DAB（10 mg/ml）后，按下述方法顯色使用。
6． 用戶自備：多聚甲醛、PBS、H2O2 、TritonX-100、檸檬酸鈉、復染蘇木素染液、蓋玻片、載玻片、染色缸。
三、檢測樣本的預處理
TUNEL檢測時樣本的預處理是試驗的關鍵所在，本說明書*的條件僅為普遍情況，用戶需根椐自已的樣本材料及*試驗結果來調整各個條件，如處理時間、處理濃度等（參照Page 9），來優(yōu)化出適合自身樣本的試驗條件，從而做出客觀的試驗結果。
1． 常規(guī)石蠟組織切片的預處理
* 注意事項：蛋白酶K處理的使用濃度、處理時間及溫度，都因組織的類型不同而有所不同，需要自已摸索優(yōu)化上述條件，如有問題，請根椐本說明書Page 9的《常見問題的原因及*解決方案》來調整條件。例如：如果凋亡細胞染色較弱時，可用高濃度的Proteinase K（400μg/mL）處理5分鐘（本試劑盒的50×Proteinase K濃度為1mg/mL）。
其它替代方法：石蠟切片的預處理也可根椐實際情況可采用下述三種替代方法之一，即蛋白酶K處理的步驟改用下述方法，其余步驟均相同：
替代方法1: 將脫蠟及水合好的切片浸入通透液中8～10 min（通透液：0.1%TritonX-100溶于0.1%檸檬酸鈉，需新鮮配制）
替代方法2：將脫蠟及水合好的切片浸入胃蛋白酶或胰蛋白酶中15～60 min（胃蛋白酶：0.25%～0.5%溶于HCl pH2，胰蛋白酶0.25%～0.5%溶于0.01N HCl ）
替代方法3: 將脫蠟及水合好的切片浸入含200ml 0.1M 、PH 6的檸檬酸緩沖液的塑料盒中，置于微波爐中350W（低檔）處理5 min。
2． 其它難于處理的組織切片的預處理
3． 陽性對照及陰性對照的準備
TUNEL檢測同時需要設陽性和陰性對照，以顯示試驗的客觀性及準確性。因此需要按下述方法準備兩個樣本來制備陽性及陰性片，其后續(xù)步驟與待測樣本同樣進行。
A：陽性對照樣本的準備
組織樣本在蛋白酶K處理、PBS浸洗后，再加入100μL DNase I反應液（10U～3000U DNase I，40mM Tris-HCl PH 7.9,10 mM NaCl, 6mM MgCl2, 10mM CaCl2）（用戶自備）
室溫～37℃處理10～30 min，其余步驟均相同。如有問題詳見Page 9.
B：陰性對照樣本的準備
在Page 7標記反應制備TdT酶反應液時，不添加TdT酶，其余步驟均相同。
四、標記和顯色反應：
操作注意事項：
1. 進行PBS清洗時，以5分鐘清洗3次為標準。
2. PBS清洗后，為了各種反應的有效進行，請盡量除去PBS溶液后再進行下一步反應
3. 在載玻片上的樣本上加上實驗用反應液后，請蓋上蓋玻片或保鮮膜，或在濕盒中進行，這樣可以使反應液均勻分布于樣本整體，又可以防止反應液干燥造成實驗失敗。
4. TdT酶反應液即用即配，短暫于冰上保存。不宜*保存，*保存會導酶活性的失活。
5.如果20×DAB溶液顏色變深成為紫色，則不可使用，需重新配制。
6.蘇木素復染：將切片放入蘇木素染液，染色 30min ，蒸餾水沖洗干凈后放入鹽酸甲醇溶液中5s，立即用蒸餾水沖洗干凈。分別用70%、85%、95%、無水乙醇浸泡5分鐘。用二甲苯浸泡10分鐘，更換二甲苯后再浸泡10分鐘。晾干后在切片上加中性樹膠，加蓋玻片。
| 現(xiàn)象 | 可能原因 | 建議 |
| 非特異性染色（例如：非凋亡細胞的強染色） | Biotin-dUTP的非特異性結合 | 勿使細胞干涸 在TdT酶反應之后，再用含0.1% Triton X-100和1 mg/ml BSA 的PBS洗三次。 |
| TdT酶的濃度過高 | 用TdT dilution buffer* 作1：2—1：10稀釋 | |
| 內源過氧化物酶未被封閉 | 封閉液室溫（15-25℃）封閉10min（封閉液： 3%H2O2溶于甲醇） | |
| 光照紫外線導致包埋試劑的聚合（如：甲基丙烯酸會導致樣本DNA的斷裂） | 嘗試改用其它包埋材料或其它聚合試劑 | |
| 在固定組織時樣本DNA已斷裂（內源核酸酶的作用） | 確保樣品取樣后立即固定或通過肝靜脈灌注固定 | |
| 固定后某些核酸酶活性依然較高導致DNA斷裂 | 用含有dUTP和 dAPT的溶液封閉 | |
| 染色背景較高 | 福爾馬林固定導致某些含黑色素前體的細胞染成黃色 | 嘗試以甲醇固定，但可能會降低檢測的敏感性。 |
| 內源過氧化物酶未被封閉 | 封閉液室溫（15-25℃）封閉10min（封閉液： 3%H2O2溶于甲醇） | |
| Biotin-dUTP的非特異性結合 | 在TdT酶反應之后，再用含0.1% Triton X-100和1 mg/ml BSA 的PBS洗三次。 | |
| 樣本被支原體污染 | 使用支原體檢測試劑盒檢測，如陽性則制備未被污染的新樣本 | |
| 標記反應試劑（TdT酶及dUTP）的濃度過高 | 稀釋50%，以降低標記反應的濃度 | |
| 細胞處于高度增殖期 | 在非高增殖期取樣檢測 | |
| DAB孵育時間過長 | 減少DAB染色時間 | |
| 標記率低、染色淡至無 | 如果以乙醇或甲醇固定的樣本則標記效率較低（因為在固定時染色質未能與蛋白質交聯(lián)，而在操作中丟失） | 用溶于PBS PH7.4中的4%多聚甲醛固定 或福爾馬林或戊二醛固定。 |
| 過度的固定導致與蛋白過度交聯(lián) | 縮短固定時間，或用溶于PBS PH7.4的2%多聚甲醛固定 | |
| 促滲條件不佳，以致于試劑不能到達靶分子或濃度過低 | l 增加通透劑促滲時間 l 增加通透劑的作用溫度（15-25℃） l 優(yōu)化蛋白酶K的作用濃度和作用時間（如：以400ug/ml作用5min） l 0.1M的檸檬酸鈉70℃作用30min。 |
五 常見問題的原因及*解決方案.
*TdT dilution buffer：60 mM KPB 緩沖液（pH7.2），150 mM KCl， 1 mM 2-mercaptoethanol， 50 % Glycerol
凱基相關產(chǎn)品（詳見
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