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1362次谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)
試劑盒說明書
紫外分光光度法
注意:正是測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。
產(chǎn)品內(nèi)容:
試劑一:液體×1 瓶,4℃保存。
試劑二:粉劑×1 瓶,4℃保存。
試劑三:液體×1 支,-20℃保存。
混合試劑配制:臨用前,在試劑二中加入試劑一40 mL,充分震蕩溶解后加入全部試劑三,混勻。(注意:必須現(xiàn)配現(xiàn)用,當天使用完)
試劑四:液體×1 瓶,4℃保存。
產(chǎn)品說明:
GSH-Px 是谷胱甘肽氧化還原循環(huán)中催化還原型谷胱甘肽(GSH)氧化的主要酶之一。GSH-Px不僅能夠特異地催化還原型谷胱甘肽與ROS反應,生成氧化型谷胱甘肽GSSG,從而保護生物膜免受ROS 的損害,維持細胞的正常功能;而且具有保護肝臟、提高機體免疫力、拮抗有害金屬離子對機體的傷害和增加機體抗輻射等能力。
GSH-Px 催化H2O2氧化GSH,產(chǎn)生GSSG;谷胱甘肽還原酶(GR)催化NADPH 還原GSSG,再生GSH,同時NADPH 氧化生成NADP+;NADPH 在340 nm有特征吸收峰,而NADP+沒有;通過測定340 nm光吸收減少速率來計算GSH-Px 活性。
自備儀器和用品:
紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1mL 石英比色皿和蒸餾水。
操作步驟:
一、粗酶液提?。?/span>
1. 組織:按照組織質(zhì)量(g):試劑一體積(mL)為1:5~10 的比例(建議稱取0.1g 組織,加入1mL 試劑一)進行冰浴勻漿。10000rpm,4℃離心10min,取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌:按照細胞數(shù)量104個:試劑一體積(ml)500~1000:1 的比例,建議500 萬細胞加入1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(率300w,超聲3 s,間隔7s,總時間3min)然后10000rpm,4℃,離心10min,取上清置冰上待測。
3. 血清等液體:直接測定。
二、測定操作:
1. 分光光度計預熱30 min,調(diào)節(jié)波長到340 nm,蒸餾水調(diào)零。
2. 混合試劑在25℃或者37℃(哺乳動物)水浴中預熱30min 以上。
3. 空白管:依次在1mL石英比色皿中加入100μL 蒸餾水、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻后于340nm處測定第10 s和第190s的吸光值,分別記為A空1和A空2,△A 空白管= A空1﹣A空2。
4. 測定管:依次在1mL 石英比色皿中加入100μL 上清液、800μL 預熱的混合試劑,100μL試劑四,迅速混勻后于340nm 處測定第10 s和第190s 的吸光值,分別記為 A測1 和A測2,△A 測定管= A測1﹣A測2。
注意:空白管只需測定一次。
三、GSH-Px 活性計算:
(1). 按蛋白濃度計算
GSH-Px 活力單位定義:一定溫度中,每 mg 蛋白每分鐘催化1nmol NADPH 氧化為1個酶活單位。
GSH-Px (U/mg prot)=[(△A 測定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷( Cpr×V 樣)÷T
=536×(△A 測定管-△A 空白管)÷Cpr
(2). 按樣本質(zhì)量計算
GSH-Px 活力單位定義:一定溫度中,每g 樣本每分鐘催化1nmol NADPH 氧化為1個酶活單位。
GSH-Px (U/g)=[(△A 測定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷(W×V 樣÷V樣總)÷T
=536×(△A 測定管-△A 空白管)÷W
(3). 按細胞數(shù)量計算
GSH-Px 活力單位定義:一定溫度中,每104個細胞每分鐘催化1nmol NADPH 氧化為1個酶活單位。
GSH-Px (U/104 cell)=[(△A測定管-△A空白管)÷ε÷d×V反總×109]÷(細胞數(shù)量×V樣÷V樣總)÷T
=536×(△A測定管-△A空白管)÷細胞數(shù)量
(4). 按液體體積計算
GSH-Px 活力單位定義:一定溫度中,每毫升液體每分鐘催化1nmol NADPH 氧化為1個酶活單位。
GSH-Px (U/ml)=[(△A測定管-△A空白管)÷ε÷d×V 反總×109]÷V 樣÷T
=536×(△A測定管-△A空白管)
ε:NADPH 摩爾消光系數(shù)6.22×103L/mol/cm;V 反總:反應體系總體積,1000μL=0.001 L;
106:1mol=1×106μmol; Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);V 樣:加入反應體系中上清液體,100μL =0.1 mL;V 樣總:加入提取液體積,1mL;W,樣本質(zhì)量,g;T:反應時間,3min。
注意事項:
1. 樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力。
2. 混合試劑和底物液須臨用前配制,配完后置于冰上,當天使用完。
3. 測定過程操作須迅速。
4. 細胞中GSH-Px 活性測定時,細胞數(shù)目須在300 萬-500 萬之間,細胞中GSH-Px 的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。
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