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CAS | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
---|---|---|---|
分子量 | 詳詢 | 分子式 | 詳詢 |
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 100T/48S |
貨號 | BC5285 | 應用領域 | 環(huán)保,化工,生物產業(yè),農業(yè),綜合 |
主要用途 | D-乳酸脫氫酶活性檢測 |
D-乳酸脫氫酶(D-LDH)活性檢測試劑盒說明書
微量法
貨號:BC5285
規(guī)格:100T/48S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液 | 液體60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體7 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 粉劑×1支 | -20℃保存 |
試劑三 | 液體7 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑四 | 液體20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
標準品 | 液體1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 試劑二:臨用前加入0.8 mL蒸餾水,充分溶解。用不完的試劑分裝保存,-20℃可保存4周,避免反復凍融;
2、 標準品:20 μmol/mL 酸鈉溶液。
產品說明:
乳酸脫氫酶(Lactate dehydrogenase,LDH)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中,是糖酵解途徑的末端酶,催化丙 酮酸與乳,苯 肼,酸之間的可逆反應,伴隨著NAD+/NADH之間互變。根據其催化底物-乳酸構型的不同,可分為D-乳酸脫氫酶(D-LDH,EC 1.1.1.28)與L-乳酸脫氫酶(L-LDH,EC 1.1.1.27)。
D-LDH催化NAD+氧化D-乳酸生成酸,酸進一步與2,4-二硝* 肼作用生成酸二硝基 苯腙,在堿性溶液中顯棕紅色,顏色深淺與酸濃度成正比。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標儀、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、臺式離心機、可調式移液器、微量玻璃比色皿/96孔板、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
1. 細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率200W,超聲3s,間隔10s,重復30次);8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
2. 組織:按照組織質量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
3. 血清(漿)等其他液體:直接檢測。若有沉淀請離心后取上清待測。
二、測定步驟
1、 可見分光光度計/酶標儀預熱30min以上,調節(jié)波長至450nm,分光光度計蒸餾水調零。
2、 標準溶液的稀釋:將20μmol/mL酸鈉標準溶液用蒸餾水進行稀釋得到2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125、0.015625、0.0078125μmol/mL標準溶液備用。
3、 標準溶液稀釋可參考下表:
序號 | 稀釋前濃度(μmol/mL) | 標準溶液體積(µL) | 蒸餾水體積(µL) | 稀釋后濃度(μmol/mL) |
1 | 20 | 100 | 900 | 2 |
2 | 2 | 100 | 100 | 1 |
3 | 1 | 100 | 100 | 0.5 |
4 | 0.5 | 100 | 100 | 0.25 |
5 | 0.25 | 100 | 100 | 0.125 |
6 | 0.125 | 100 | 100 | 0.0625 |
7 | 0.0625 | 100 | 100 | 0.03125 |
8 | 0.03125 | 100 | 100 | 0.015625 |
9 | 0.015625 | 100 | 100 | 0.0078125 |
備注:實驗中每個標準管需10µL標準溶液。
4、 在1.5mLEP管/96孔板按下表步驟加樣
試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 | 標準管 | 空白管 |
待測樣本 | 10 | 10 | - | - |
標準液 | - | - | 10 | - |
試劑一 | 50 | 50 | 50 | 50 |
試劑二 | 10 | - | - | - |
蒸餾水 | - | 10 | 10 | 20 |
試劑三 | 50 | 50 | 50 | 50 |
充分混勻,37℃水浴15min | ||||
試劑四 | 150 | 150 | 150 | 150 |
充分混勻,室溫靜置3min,取200μL轉移至微量玻璃比色皿或96孔板中,450nm下測定吸光度,計算ΔA測定=A測定-A對照,ΔA標準=A標準-A空白。空白管和標準曲線只需做1-2次,每個測定管需要設一個對照管。
三、D-LDH活性計算
1. 標準曲線的繪制
根據標準管的濃度(x,μmol/mL)和吸光度ΔA標準(y,ΔA標準),建立標準曲線。根據標準曲線,將ΔA測定(y,ΔA測定)帶入公式計算樣本濃度(x,μmol/mL)。
2. D-LDH活性計算
(1) 按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘催化產生1nmol酸定義為一個酶活力單位。
D-LDH活性(U/mg prot)= x×V樣÷(Cpr×V樣)÷T×103×F=66.67×x÷Cpr×F
(2) 按樣本質量計算
單位的定義:每g組織每分鐘催化產生1nmol酸定義為一個酶活力單位。
D-LDH活性(U/g 質量)= x×V樣÷(W÷V樣總×V樣)÷T×103×F=66.67×x÷W×F
(3) 按細菌/細胞數(shù)量計算
單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘催化產生1nmol酸定義為一個酶活力單位。
(4) D-LDH活性(U/104 cell)= x×V樣÷(N÷V樣總×V樣)÷T×103×F=66.67×x×F÷N
(5) 按血清(漿)等液體體積計算
單位的定義:每mL血清(漿)等液體每分鐘催化產生1nmol酸定義為一個酶活力單位。
D-LDH活性(U/mL)=x×V樣÷V樣÷T×103×F=66.67×x×F
V樣:反應體系中加入的樣本體積,0.01mL;V樣總:加入的提取液體積,1mL;T:反應時間,15min;Cpr:蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;N:細胞或細菌數(shù)量,以萬計;103:單位換算系數(shù),1μmol/mL=103nmol/mL;F:樣本稀釋倍數(shù)。
注意事項:
1. 如果測定管吸光值接近空白或ΔA測定過低,可適當加大樣本量后重新測定;如果測定管吸光值超過1.5或ΔA測定超過0.4,建議將樣本用提取液適當稀釋后進行測定。注意同步修改計算公式。
實驗實例:
1、 取0.109g兔腎加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.425-0.298=0.127,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.220,按樣本質量計算酶活得:
D-LDH活性(U/g 質量)=66.67×x÷W×F =134.520 U/g 質量
2、 取0.1018g擬南芥加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.236-0.196=0.04,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.058,按樣本質量計算酶活得:
D-LDH活性(U/g 質量)=66.67×x÷W×F =38.109 U/g 質量
3、 取500萬細胞加入1mL提取液進行冰浴勻漿,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.225-0.174=0.051,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.079,按細菌/細胞數(shù)目計算酶活得:
D-LDH活性(U/104 cell)=0.133×x×F =0.010 U/104 cell
4、 取10μL胎牛血清,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA測定=A測定-A對照=0.322-0.201=0.121,帶入標準曲線y=0.5379x+0.0087,計算x=0.209,按液體體積計算酶活得:
D-LDH活性(U/mL)=66.67×x×F =13.919 U/mL
參考文獻:
[1] Huang P H, Fu L C, Huang C S, et al. The uptake of oligogalacturonide and its effect on growth inhibition, lactate dehydrogenase activity and galactin-3 release of human cancer cells[J]. Food chemistry, 2012, 132(4): 1987-1995.
[2] Huang Y N, Xu G T, You C P. The research progress of the lactate dehydrogenases in lactic acid bacteria[J]. Science and Technology of Food Industry, 2016, (08): 369-373.
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