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Rat C-Peptide ELISA Kit  
Catalog No. CSB-E05067r
（96T）
 
 
 
 
 
  This immunoassay kit allows for the in vitro quantitative determination of rat C-Peptide
concentrations in cell culture supernates, serum, plasma and other biological fluids.
  Expiration date      six months from the date of manufacture
  FOR RESEARCH USE ONLY. NOT FOR USE IN DIAGNOSTIC PROCEDURES.
 
 
 
 
 
CUSABIO BIOTECH CO., Ltd.
http://www.cusabio.com/    http://www.cusabio.cn/
: cusabio@cusabio.com    cusabio@cusabio.cn 
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INTRODUCTION
C  Peptide  is  part  of  the molecule  of  Proinsulin,  that  consists  of  three  parts:  C
Peptide and two long strands of amino acids （called the alpha and beta chains） that
later become linked together to form the insulin molecule. From every molecule of
proinsulin, one molecule of  insulin plus one molecule of C Peptide are produced.
C peptide is released into the blood stream in equal amounts to insulin. A test of C
peptide  levels will show how much  insulin  the body  is making.  Insulin decreases
blood  glucose  concentration.  It  increases  cell  permeability  to  monosaccharides,
amino acids and fatty acids. It accelerates glycolysis, the pentose phosphate cycle,
and glycogen synthesis in liver.
PRINCIPLE OF THE ASSAY
The  microtiter  plate  provided  in  this  kit  has  been  pre-coated  with  an  antibody
specific  to  C-Peptide  Standards  or  samples  are  then  added  to  the  appropriate
microtiter plate wells with a biotin-conjugated polyclonal antibody preparation  
specific for C-Peptide and Avidin conjugated to Horseradish Peroxidase （HRP） is
added  to  each  microplate  well  and  incubated.  Then  a  TMB  （3,3'5,  5'
tetramethyl-benzidine）  substrate  solution  is added  to each well. Only  those wells
that contain C-Peptide, biotin-conjugated antibody and enzyme-conjugated Avidin
will exhibit a change in color. The enzyme-substrate reaction is terminated by the
addition  of  a  sulphuric  acid  solution  and  the  color  change  is  measured
spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm ±  2 nm. The concentration of
C-Peptide in the samples is then determined by comparing the O.D. of the samples
to the standard curve. 
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DETECTION RANGE
1.6 ng/ml-100 ng/ml. The standard curve concentrations used for the ELISA’s were
100 ng/ml, 50 ng/ml, 25 ng/ml, 12.5 ng/ml, 6.2 ng/ml, 3.2 ng/ml, 1.6 ng/ml.
SPECIFICITY
This  assay  recognizes  recombinant  and  natural  rat  C-Peptide  No  significant
cross-reactivity or interference was observed.
SENSITIVITY
The minimum detectable dose of rat C-Peptide is typically less than 0.4 ng/ml.
The  sensitivity of  this assay, or Lower Limit of Detection  （LLD） was defined as
the lowest protein concentration that could be differentiated from zero.
MATERIALS PROVIDED
Reagent      Quantity
Assay plate  1
Standard  2
Sample Diluent      1 x 20 ml
Biotin-antibody Diluent      1 x 10 ml
HRP-avidin Diluent        1 x 10 ml
Biotin-antibody      1 x 120µl
HRP-avidin  1 x 120µl
Wash Buffer      
1 x 20 ml
  （25×concentrate）
TMB Substrate      1 x 10 ml
Stop Solution      1 x 10 ml 
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STORAGE
1.  Unopened  test kits  should be  stored at 2-8°C upon  receipt and  the microtiter
plate  should be kept  in a  sealed bag with desiccants  to minimize exposure  to
damp  air. The  test kit may be used  throughout  the  expiration date of  the kit.
Refer to the package label for the expiration date.
2.  Opened test kits will remain stable until the expiring date shown, provided it is
stored as prescribed above.    
3.  A microtiter  plate  reader with  a  bandwidth  of  10  nm  or  less  and  an  optical
density range of 0-3 OD or greater at 450nm wavelength is acceptable for use
in absorbance measurement.
REAGENT PREPARATION
Bring all reagents to room temperature before use.  
1.  Wash Buffer    If crystals have  formed  in  the concentrate, warm up  to  room
temperature  and  mix  gently  until  the  crystals  have  compley  dissolved.
Dilute 20 ml of Wash Buffer Concentrate  into deionized or distilled water  to
prepare 500 ml of Wash Buffer.
2.  Standard    Reconstitute  the Standard with 1.0 ml of Sample Diluent. This
reconstitution produces a  stock  solution of 100 ng/ml. Allow  the  standard  to
sit  for a minimum of 15 minutes with gentle agitation prior  to making  serial
dilutions. The undiluted standard serves as the high standard （100 ng/ml）. The
Sample Diluent serves as the zero standard （0 ng/ml）.
3.  Biotin-antibody    Dilute  to  the working  concentration  specified  on  the  vial
label using Biotin-antibody Diluent（1:100）, respectively. 
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4.  HRP-avidin    Dilute  to  the working concentration specified on  the vial  label
using HRP-avidin Diluent（1:100）, respectively.
Precaution: The Stop Solution provided with this kit is an acid solution. Wear
eye, hand, face, and clothing protection when using this material.
OTHER SUPPLIES REQUIRED
  Microplate  reader  capable  of  measuring  absorbance  at  450  nm,  with  the
correction wavelength set at 540 nm or 570 nm.
  Pipettes and pipette tips.
  Deionized or distilled water.
  Squirt bottle, manifold dispenser, or automated microplate washer.
SAMPLE COLLECTION AND STORAGE
  Cell Culture Supernates    Remove particulates by centrifugation and assay
immediay or aliquot and store samples at -20° C. Avoid repeated
freeze-thaw cycles.
  Serum    Use a  serum  separator  tube  （SST） and allow  samples  to clot  for 30
minutes  before  centrifugation  for  15 minutes  at  1000  g. Remove  serum  and
assay  immediay  or  aliquot  and  store  samples  at  -20°  C.  Avoid  repeated
freeze-thaw cycles.
  Plasma    Collect plasma using citrate, EDTA, or heparin as an anticoagulant.
Centrifuge for 15 minutes at 1000 x g within 30 minutes of collection. Assay
immediay or aliquot and store samples at -20° C. Avoid repeated
freeze-thaw cycles.
Note: Grossly hemolyzed samples are not suitable for use in this assay. 
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ASSAY PROCEDURE
Bring all reagents and samples to room temperature before use. It is
recommended that all samples, standards, and controls be assayed in duplicate.
1.  Add 100µl of Standard, Blank, or Sample per well. Cover with  the adhesive
strip. Incubate for 2 hours at 37° C.  
2.  Remove the liquid of each well, don’t wash.  
3.  Add 100µl of Biotin-antibody working solution  to each well.  Incubate  for 1
hour at 37°C. Biotin-antibody working solution may appear cloudy. Warm up
to room temperature and mix gently until solution appears uniform.
4.  Aspirate each well and wash,  repeating  the process  three  times  for a  total of
three washes. Wash  by  filling  each well with Wash Buffer  （200µl）  using  a
squirt  bottle,  multi-channel  pipette,  manifold  dispenser  or  autowasher.
Complete  removal  of  liquid  at  each  step  is  essential  to  good  performance.
After  the  last  wash,  remove  any  remaining  Wash  Buffer  by  aspirating  or
decanting. Invert the plate and blot it against clean paper towels.
5.  Add 100µl of HRP-avidin working solution to each well. Cover the microtiter
plate with a new adhesive strip. Incubate for 1 hour at 37° C.
6.  Repeat the aspiration and wash three times as step 4.
7.  Add 90µl of TMB Substrate  to each well.  Incubate  for 30 minutes at 37°C.
Keeping  the plate away  from drafts and other  temperature fluctuations  in  the
dark.
8.  Add  50µl  of  Stop  Solution  to  each  well.  If  color  change  does  not  appear
uniform, gently tap the plate to ensure thorough mixing.
9.  Determine  the  optical  density  of  each  well  within  30  minutes,  using  a
microplate reader set to 450 nm. 
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CALCULATION OF RESULTS
Average the duplicate readings for each standard, control, and sample and subtract
the average zero standard optical density. Create a standard curve by reducing the
data  using  computer  software  capable  of  generating  a  four  parameter  logistic
（4-PL）curve-fit. As an alternative, construct a standard curve by plotting the mean
absorbance for each standard on the y-axis against the concentration on the x-axis
and  draw  a  best  fit  curve  through  the  points  on  the  graph.  The  data  may  be
linearized by plotting the log of the C-Peptide. concentrations versus the log of the
O.D. and the best fit line can be determined by regression analysis. This procedure
will  produce  an  adequate  but  less  precise  fit  of  the  data.  If  samples  have  been
diluted,  the concentration read from  the standard curve must be multiplied by  the
dilution factor.
LIMITATIONS OF THE PROCEDURE
  The kit should not be used beyond the expiration date on the kit label.
  Do not mix or substitute reagents with those from other lots or sources.
  It is important that the Calibrator Diluent selected for the standard curve be
consistent with the samples being assayed.
  If samples generate values higher than the highest standard, dilute the samples
with the appropriate Calibrator Diluent and repeat the assay.
  Any  variation  in  Standard  Diluent,  operator,  pipetting  technique,  washing
technique,  incubation  time or  temperature, and kit age can cause variation  in
binding.
  This assay  is designed  to eliminate  interference by soluble receptors, binding
proteins, and other factors present in biological samples. Until all factors have
been  tested  in  the  Quantikine  Immunoassay,  the  possibility  of  interference
cannot be excluded. 
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TECHNICAL HINTS
  When mixing or reconstituting protein solutions, always avoid foaming.
  To avoid cross-contamination, change pipette  tips between additions of each
standard level, between sample additions, and between reagent additions. Also,
use separate reservoirs for each reagent.
  When  using  an  automated  plate  washer,  adding  a  30  second  soak  period
following  the  addition  of wash  buffer,  and/or  rotating  the  plate  180  degrees
between wash steps may improve assay precision.
  To ensure accurate results, proper adhesion of plate sealers during  incubation
steps is necessary.
  Substrate  Solution  should  remain  colorless  until  added  to  the  plate.  Keep
Substrate  Solution  protected  from  light.  Substrate  Solution  should  change
from colorless to gradations of blue.
  Stop Solution should be added  to  the plate  in  the same order as  the Substrate
Solution. The color developed in the wells will turn from blue to yellow upon
addition of  the Stop Solution. Wells  that  are green  in  color  indicate  that  the
Stop Solution has not mixed thoroughly with the Substrate Solution.
     
     
     
     
     
      
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大鼠 大鼠 大鼠 大鼠 C CC C 肽 肽肽 肽（C （C（C （C- -- -Peptide） Peptide） Peptide） Peptide）酶聯(lián)免疫分析 酶聯(lián)免疫分析 酶聯(lián)免疫分析 酶聯(lián)免疫分析     
試劑盒使用說明書 試劑盒使用說明書 試劑盒使用說明書 試劑盒使用說明書
本試劑盒僅供研究使用 本試劑盒僅供研究使用 本試劑盒僅供研究使用 本試劑盒僅供研究使用
產(chǎn)品編號 產(chǎn)品編號 產(chǎn)品編號 產(chǎn)品編號： ：： ：CSB-E05067r
檢測范圍 檢測范圍 檢測范圍 檢測范圍： ：： ：1.6 ng/ml - 100 ng/ml
zui低檢測限 zui低檢測限 zui低檢測限 zui低檢測限： ：： ：0.4 ng/ml,
特異性 特異性 特異性 特異性： ：： ：本試劑盒可同時檢測天然或重組的大鼠 C-Peptide，且與其他相
關(guān)蛋白無交叉反應(yīng)。
有效期 有效期 有效期 有效期： ：： ：6 個月
預(yù)期應(yīng)用 預(yù)期應(yīng)用 預(yù)期應(yīng)用 預(yù)期應(yīng)用： ：： ：ELISA 法定量測定大鼠血清、血漿、細胞培養(yǎng)上清或其它相關(guān)
生物液體中 C-Peptide 含量。
說明 說明 說明 說明  
  試劑盒保存：-20℃（較長時間不用時）；2-8℃（頻繁使用時）。
  濃洗滌液低溫保存會有鹽析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶。  
  中、英文說明書可能會有不一致之處，請以英文說明書為準(zhǔn)。
  剛開啟的酶聯(lián)板孔中可能會含有少許水樣物質(zhì)，此為正常現(xiàn)象，不會對實
驗結(jié)果造成任何影響。
實驗原理 實驗原理 實驗原理 實驗原理
用純化的抗體包被微孔板，制成固相載體，往包被抗 C-Peptide 抗體的
微孔中依次加入標(biāo)本或標(biāo)準(zhǔn)品、生物素化的抗 C-Peptide 抗體、HRP 標(biāo)記的
親和素，經(jīng)過*洗滌后用底物 TMB 顯色。TMB 在過氧化物酶的催化下轉(zhuǎn)
化成藍色，并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成zui終的黃色。顏色的深淺和樣品中的
C-Peptide 呈正相關(guān)。用酶標(biāo)儀在 450nm 波長下測定吸光度（OD 值），計算
樣品濃度。   
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試劑盒組成及試劑配制 試劑盒組成及試劑配制 試劑盒組成及試劑配制 試劑盒組成及試劑配制  
1.  酶聯(lián)板 酶聯(lián)板 酶聯(lián)板 酶聯(lián)板（Assay plate ）：                                                              一塊（96 孔）。   
2.  標(biāo)準(zhǔn)品 標(biāo)準(zhǔn)品 標(biāo)準(zhǔn)品 標(biāo)準(zhǔn)品（Standard）：                                                                  2 瓶（凍干品）。 
3.  樣品稀釋液 樣品稀釋液 樣品稀釋液 樣品稀釋液（Sample Diluent）：                                                      1×20ml/瓶。 
4.  生物素標(biāo)記抗體稀釋液 生物素標(biāo)記抗體稀釋液 生物素標(biāo)記抗體稀釋液 生物素標(biāo)記抗體稀釋液（ （（ （Biotin-antibody Diluent） ）） ）：                   1×10ml/瓶。 
5.  辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液（ （（ （HRP-avidin Diluent） ）） ）：  1×10ml/瓶。 
6.  生物素標(biāo)記抗體 生物素標(biāo)記抗體 生物素標(biāo)記抗體 生物素標(biāo)記抗體（ （（ （Biotin-antibody） ）） ）：                        1×120µl/瓶（1：100）。 
7.  辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素（ （（ （HRP-avidin） ）） ）：          1×120µl/瓶（1：100）。 
8.  底物溶液 底物溶液 底物溶液 底物溶液（ （（ （TMB Substrate） ）） ）：                                                      1×10ml/瓶。   
9.  濃洗滌液 濃洗滌液 濃洗滌液 濃洗滌液（ （（ （Wash Buffer） ）） ）：     1×20ml/瓶，使用時每瓶用蒸餾水稀釋 25 倍。   
10. 終止 終止 終止 終止液 液液 液（ （（ （Stop Solution） ）） ）：                                        1×10ml/瓶（2N H2SO4）。 
需要而未提供的試劑和器材 需要而未提供的試劑和器材 需要而未提供的試劑和器材 需要而未提供的試劑和器材
1.  標(biāo)準(zhǔn)規(guī)格酶標(biāo)儀
2.  高速離心機
3.  電熱恒溫培養(yǎng)箱
4.  干凈的試管和 Eppendof管
5.  系列可調(diào)節(jié)移液器及吸頭，一次檢測樣品較多時，用多通道移液器
6.  蒸餾水，容量瓶等
標(biāo)本的采集及保存 標(biāo)本的采集及保存 標(biāo)本的采集及保存 標(biāo)本的采集及保存  
1.  血清：全血標(biāo)本請于室溫放置 2 小時或 4℃過夜后于 1000  x  g離心 20 分
鐘，取上清即可檢測，或?qū)?biāo)本放于-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍
融。
2.  血漿：可用 EDTA或肝素作為抗凝劑，標(biāo)本采集后 30 分鐘內(nèi)于 2  -  8° C
1000 x g離心 15 分鐘，或?qū)?biāo)本放于-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍
融。
3.  細胞培養(yǎng)物上清或其它生物標(biāo)本：1000  x  g離心 20 分鐘，取上清即可檢
測，或?qū)?biāo)本放于-20℃或-80℃保存，但應(yīng)避免反復(fù)凍融。
注 注注 注： ：： ：標(biāo)本溶血會影響zui后檢測結(jié)果 標(biāo)本溶血會影響zui后檢測結(jié)果 標(biāo)本溶血會影響zui后檢測結(jié)果 標(biāo)本溶血會影響zui后檢測結(jié)果， ，， ，因此溶血標(biāo)本不宜進行此項檢測 因此溶血標(biāo)本不宜進行此項檢測 因此溶血標(biāo)本不宜進行此項檢測 因此溶血標(biāo)本不宜進行此項檢測。 。。 。 
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標(biāo)本的稀釋原則 標(biāo)本的稀釋原則 標(biāo)本的稀釋原則 標(biāo)本的稀釋原則： ：： ：
首先通過文獻檢索的方式了解待測樣本的大致含量，確定適當(dāng)?shù)南♂尡稊?shù)。
只有稀釋至標(biāo)準(zhǔn)曲線的范圍內(nèi)，檢測的結(jié)果才是準(zhǔn)確的。稀釋的過程中，應(yīng)
做好詳細的記錄。zui后計算濃度時，稀釋了“N”倍，標(biāo)本的濃度應(yīng)再乘以“N”。 
標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋原則 標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋原則 標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋原則 標(biāo)準(zhǔn)品的稀釋原則： ：： ：2 瓶，每瓶臨用前以樣品稀釋液稀釋至 1ml，蓋好
后靜置 10 分鐘以上，然后反復(fù)顛倒/搓動以助溶解，其濃度為 100 ng/ml,，做
系列倍比稀釋后，分別稀釋 100 ng/ml,50 ng/ml, 25 ng/ml, 12.5 ng/ml, 6.2 ng/ml,
3.2 ng/ml, 1.6 ng/ml，樣品稀釋液直接作為標(biāo)準(zhǔn)濃度 0 ng/ml,，臨用前 15 分鐘
內(nèi)配制。
如配制 50 ng/ml,標(biāo)準(zhǔn)品：取 0.5ml（不要少于 0.5ml）100 ng/ml,的上述標(biāo)準(zhǔn)品
加入含 0.5ml 樣品稀釋液的 Eppendorf管中，混勻即可，其余濃度以此類推。
生物素標(biāo)記抗體的稀釋原則 生物素標(biāo)記抗體的稀釋原則 生物素標(biāo)記抗體的稀釋原則 生物素標(biāo)記抗體的稀釋原則： ：： ：
臨用前以生物素標(biāo)記抗體稀釋液稀釋，稀釋前根據(jù)預(yù)先計算好的每次實驗所
需的總量配制（每孔 100µl），實際配制時應(yīng)多配制 0.1-0.2ml。如 10µl 生物素
標(biāo)記抗體加 990µl 生物素標(biāo)記抗體稀釋液的比例配制，輕輕混勻，在使用前
一小時內(nèi)配制。
辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素的稀釋原則 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素的稀釋原則 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素的稀釋原則 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素的稀釋原則： ：： ：
臨用前以辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液稀釋，稀釋前根據(jù)預(yù)先計算好的
每次實驗所需的總量配制（每孔 100µl），實際配制時應(yīng)多配制 0.1-0.2ml。如
10µl 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素加 990µl 辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素稀釋液
的比例配制，輕輕混勻，在使用前一小時內(nèi)配制。
操作步驟 操作步驟 操作步驟 操作步驟
實驗開始前，請?zhí)崆芭渲煤盟性噭?，試劑或樣品稀釋時，均需混勻，混勻
時盡量避免起泡。每次檢測都應(yīng)該做標(biāo)準(zhǔn)曲線。如樣品濃度過高時，用樣品
稀釋液進行稀釋，以使樣品符合試劑盒的檢測范圍。 
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1.  加樣：分別設(shè)空白孔、標(biāo)準(zhǔn)孔、待測樣品孔?？瞻卓准訕悠废♂屢?100µl，
余孔分別加標(biāo)準(zhǔn)品或待測樣品 100µl，注意不要有氣泡，加樣將樣品加于
酶標(biāo)板孔底部，盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻，酶標(biāo)板加上蓋或覆膜，
37℃反應(yīng) 120 分鐘。
為保證實驗結(jié)果有效性，每次實驗請使用新的標(biāo)準(zhǔn)品溶液。
2.  棄去液體，甩干，不用洗滌。每孔加生物素標(biāo)記抗體工作液  100µl（取 1µl
生物素標(biāo)記抗體加 99µl 生物素標(biāo)記抗體稀釋液的比例配制，輕輕混勻，
在使用前一小時內(nèi)配制），37 ,60 ℃ 分鐘。
3.  溫育 60 分鐘后，棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板 3 次，每次浸泡 1-2 分鐘，
200µl/每孔，甩干。  
4.  每孔加辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素工作液（同生物素標(biāo)記抗體工作液）
100µl，37℃，60 分鐘。
5.  溫育 60 分鐘后，棄去孔內(nèi)液體，甩干，洗板 5 次，每次浸泡 1-2 分鐘，
200µl/每孔，甩干。
6.  依序每孔加底物溶液 90µl，37℃避光顯色（ （（ （30 分鐘內(nèi)，此時肉眼可見標(biāo)
準(zhǔn)品的前 3-4 孔有明顯的梯度藍色，后 3-4 孔梯度不明顯，即可終止）。
7.  依序每孔加終止溶液 50µl，終止反應(yīng)（此時藍色立轉(zhuǎn)黃色）。終止液的加
入順序應(yīng)盡量與底物液的加入順序相同。為了保證實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性，底
物反應(yīng)時間到后應(yīng)盡快加入終止液。
8.  用酶聯(lián)儀在 450nm 波長依序測量各孔的光密度（OD值）。  在加終止液后
15 分鐘以內(nèi)進行檢測。
實驗備注 實驗備注 實驗備注 實驗備注
1.  用戶在初次使用試劑盒時，應(yīng)將各種試劑管離心數(shù)分鐘，以便試劑集中到
管底。
2.  每次實驗留一孔作為空白調(diào)零孔，該孔不加任何試劑，只是zui后加底物溶
液及終止液。測量時先用此孔調(diào) OD值至零。  
3.  為防止樣品蒸發(fā)，試驗時將反應(yīng)板放于鋪有濕布的密閉盒內(nèi)，酶標(biāo)板加上
蓋或覆膜。
4.  未使用完的酶標(biāo)板或者試劑，請于 2-8℃保存。標(biāo)準(zhǔn)品、生物素標(biāo)記抗體
工作液、辣根過氧化物酶標(biāo)記親和素工作液請依據(jù)所需的量配置使用。請
勿重復(fù)使用已稀釋過的標(biāo)準(zhǔn)品、生物素標(biāo)記抗體工作液、或辣根過氧化物
酶標(biāo)記親和素工作液。
5.  建議檢測樣品時均設(shè)雙孔測定，以保證檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。 
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洗板方法 洗板方法 洗板方法 洗板方法
手工洗板方法：吸去（不可觸及板壁）或甩掉酶標(biāo)板內(nèi)的液體；在實驗臺上
鋪墊幾層吸水紙，酶標(biāo)板朝下用力拍幾次；將推薦的洗滌緩沖液至少 0.3ml
注入孔內(nèi)，浸泡 1-2 分鐘。根據(jù)需要，重復(fù)此過程數(shù)次。
自動洗板：如果有自動洗板機，應(yīng)在熟練使用后再用到正式實驗過程中。
計算 計算 計算 計算
以標(biāo)準(zhǔn)物的濃度為橫坐標(biāo)（對數(shù)坐標(biāo)），OD值為縱坐標(biāo)（普通坐標(biāo)），在半對
數(shù)坐標(biāo)紙上繪出標(biāo)準(zhǔn)曲線，根據(jù)樣品的 OD 值由標(biāo)準(zhǔn)曲線查出相應(yīng)的濃度；
再乘以稀釋倍數(shù)；或用標(biāo)準(zhǔn)物的濃度與 OD 值計算出標(biāo)準(zhǔn)曲線的直線回歸方
程式，將樣品的 OD 值代入方程式，計算出樣品濃度，再乘以稀釋倍數(shù)，即
為樣品的實際濃度。  
注意事項 注意事項 注意事項 注意事項
1.  底物請避光保存。
2.  當(dāng)混合蛋白溶液時應(yīng)盡量輕緩，避免起泡。
3.  請每次測定的同時做標(biāo)準(zhǔn)曲線，做復(fù)孔。
4.  洗滌過程非常重要，不充分的洗滌易造成假陽性。
5.  不要用其它生產(chǎn)廠家的試劑替換試劑盒中的試劑。
6.  一次加樣時間控制在 5 分鐘內(nèi)，如標(biāo)本數(shù)量多，推薦使用排槍加樣。 
7.  在配制標(biāo)準(zhǔn)品、檢測溶液工作液時，請以相應(yīng)的稀釋液配制，不能混淆。 
8.  如標(biāo)本中待測物質(zhì)含量過高，請先稀釋后再測定，計算時請zui后乘以稀釋
倍數(shù)。 
 
 

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