北京迪科馬科技有限公司(迪馬科技)
59種植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量的測定
檢測樣品:人參 枸杞
檢測項目:59種植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量
方案概述:迪馬科技根據(jù)公示內(nèi)容,參考《植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法國家藥品標準草案公示稿》《植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法第一法59種植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法》,重現(xiàn)了此方案,使用HPLC-MS/MS法,乙腈提取,外標法定量,NavigatorsilC18,150x3.0mm,2.7μm(Cat.#:88005)色譜柱分析了人參、枸杞樣品中的59種植物生長調(diào)節(jié)劑。
59種植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法
HPLC-MS/MS法
參考標準《植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法
國家藥品標準草案公示稿 第一法》
2024年7月26日,國家藥典委(shouci發(fā)布)公示了植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法國家藥品標準草案。
本次草案用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定藥材及飲片或制劑中部分植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量,主要涉及59種植物生長調(diào)節(jié)劑、9種水溶性植物生長調(diào)節(jié)劑及乙烯利殘留量的檢測。該標準選擇了我國食品、中藥種植中使用較多和檢出率較高的植物調(diào)節(jié)劑品種。同時,參考國內(nèi)外的食品標準法規(guī),選擇了我國食品安全國家標準、國際食品法典中規(guī)定的有最大殘留xianliang的品種,以及農(nóng)業(yè)部登記的品種,共完成69種植調(diào)劑品種的測定方法研究;在代表性樣品的選擇上,兼顧不同藥用部位及干擾成分,以提高方法的通用性。
迪馬科技根據(jù)公示內(nèi)容,參考《植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法國家藥品標準草案公示稿》《植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法 第一法 59 種植物生長調(diào)節(jié)劑殘留量測定法》,重現(xiàn)了此方案,使用HPLC-MS/MS法,乙腈提取,外標法定量,NavigatorsilTM C18,150x3.0mm,2.7μm (Cat.#: 88005) 色譜柱分析了人參、枸杞樣品中的59種植物生長調(diào)節(jié)劑,除草案中標注"*"的待測組分,其他組分加標回收率在60%-120%范圍內(nèi),符合標準草案規(guī)定。
本方案適用于人參、枸杞中59種植物生長調(diào)節(jié)劑的檢測。
(1) 59種植物生長調(diào)節(jié)劑混合標準儲備液: 50μg/mL溶于乙腈1mL,迪馬標準品部提供 (Cat.#:48409);
(2) 混合標準中間液: 準確吸取1mL混合標準儲備液,乙腈定容至10mL,配制成終濃度5μg/mL的混合標準溶液;
(3) 混合標準工作液: 吸取適量混合標準中間液,用乙腈稀釋至終濃度100ng/mL。
取供試品,粉碎成粉末(過三號篩),取約3g,精密稱定,置50mL聚苯乙烯具塞離心管中,精密加水 10mL,渦旋使藥粉充分浸潤,放置30分鐘,精密加入乙腈15mL,渦旋使混勻,置振蕩器上劇烈振蕩(每分鐘500次)5分鐘,加入無水硫酸鎂、氯化鈉、檸檬酸三鈉和檸檬酸氫二鈉的混合粉末(4:1:1:0.5) 6.5g(Cat.#: 64521s),立即搖散,再置振蕩器上劇烈振蕩(每分鐘500次)3分鐘,于冰浴中冷卻10分鐘,離心(每分鐘4000轉(zhuǎn))5分鐘,待凈化。
精密吸取上清液9mL,置已預先裝有凈化材料的分散固相萃取凈化管 [無水硫酸鎂900mg、十八烷基硅烷鍵合硅膠(C18)450mg和硅膠(Silica)100mg (Cat.#:64745);枸杞樣品,額外加入石墨化炭(Carb) 45mg (Cat.#: 64744)]中,渦旋使充分混勻,再置振蕩器上劇烈振蕩(每分鐘500次)5分鐘使凈化wanquan,離心(每分鐘4000轉(zhuǎn))5分鐘,精密吸取上清液5mL,置氮吹儀上于40℃水浴濃縮至約0.4mL,加乙腈稀釋至1mL,渦旋混勻,用0.22μm Nylon濾膜(Cat.#: 37177)濾過,取續(xù)濾液,即得。
備注:同方法制備基質(zhì)匹配標準溶液。
(1) UPLC條件
色譜柱: NavigatorsilTM C18,150x3.0mm,2.7μm(Cat.#: 88005)
流速: 0.4mL/min
進樣量: 10μL
柱溫: 35℃
流動相: A: 0.05%甲酸溶液(含10mmol/L甲酸銨) B: 0.05%甲酸甲醇(含10mmol/L甲酸銨)
梯度設(shè)置:
(2) 質(zhì)譜條件
電離模式: ESI
掃描方式: 正/負離子掃描
檢測方式: 多反應(yīng)監(jiān)測
電噴霧電壓: 4200/-4500V
霧化氣壓力: 50psi
輔助氣壓力: 50psi
氣簾氣壓力: 20psi
離子源溫度: 500℃
(1) 人參
(2) 使用標準加入法測定人參樣品中加標回收小于60%的組分
取適量標準中間液,同供試品溶液制備的處理方法 ,制備添加水平10μg/kg、20μg/kg、50μg/kg、100μg/kg和200μg/kg的系列混合對照品工作液,校正以下幾種待測組分。
(3) 枸杞
(4)使用標準加入法測定枸杞樣品中加標回收小于60%的組分
取適量標準中間液,同供試品溶液制備的處理方法,制備添加水平10μg/kg、20μg/kg、50μg/kg、100μg/kg和200μg/kg的系列混合對照品工作液,校正以下幾種待測組分。
注意事項:
1、加標水平100μg/kg的樣品,部分待測組分添加回收率超出了規(guī)定范圍60%-130%。其中,人參樣品: 矮壯素回收率15.80%、甲哌鎓回收率26.58%、吡啶醇回收率17.50%、反式玉米素回收率21.70%;
枸杞樣品: 矮壯素回收率32.06%、糠氨基嘌呤回收率49.42%、甲哌鎓回收率25.20%、烯腺嘌呤回收率37.38%、吡啶醇回收率27.86%、反式玉米素回收率20.02%、6-芐氨基嘌呤回收率49.98%。
2、使用標準加入法測定以上幾種待測組分,加標回收率可以達到80%-120%,在標準草案規(guī)定范圍內(nèi)。
3、以人參樣品加標回收為例,分析了7種回收率異常待測組分的主要影響因素:
① 矮壯素: 30%硅膠吸附損失以及提取損失;
② 糠氨基嘌呤: C18填料吸附損失;
③ 甲哌鎓: 47%硅膠吸附損失以及提取損失;
④ 烯腺嘌呤: C18吸附損失和10%硅膠吸附損失;
⑤ 吡啶醇: 提取損失高達60%以上,硅膠吸附損失約25%;
⑥ 反式玉米素: C18吸附損失約45%;
⑦ 6-芐氨基嘌呤: C18吸附損失約40%。
4、如果加入石墨化炭黑,對大多數(shù)待測組分均有不同程度的吸附。客戶可參考以上規(guī)律優(yōu)化提取方法和凈化方法。
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