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【CEM】Fmoc-His(Boc)-OH在基于Fmoc的固相肽合成中的應(yīng)用
檢測樣品:Fmoc的固相肽合成
檢測項目:多肽合成
方案概述:His(Boc)是一種強大的組氨酸衍生物,可以在90°C下高效偶聯(lián),提供優(yōu)良的粗純度,同時縮短偶聯(lián)時間并顯著降低差向異構(gòu)化。與其他抑制差向異構(gòu)化的Nπ保護衍生物相比,F(xiàn)moc-His(Boc)-OH更易獲得,同時保持相當(dāng)?shù)暮铣尚阅堋?/b>
一、組氨酸的差向異構(gòu)化
對映體純度極大地影響肽的生物活性;因此,避免D-異構(gòu)體含量的增加至關(guān)重要。1在固相肽合成(SPPS)的偶聯(lián)過程激活階段,組氨酸特別容易發(fā)生差向異構(gòu)化。組氨酸傾向于差向異構(gòu)化(圖1)是一種分子內(nèi)的副反應(yīng),這是由于咪唑Nπ上的孤對電子與酸性α碳?xì)涞慕咏运鶎?dǎo)致。當(dāng)氨基酸被激活時,1號位的孤對電子具有足夠的堿性以進行去質(zhì)子化,從而形成一個無立體選擇性的酯烯醇鹽22。
此時,轉(zhuǎn)化為L-或D-異構(gòu)體3并沒有熱力學(xué)上的優(yōu)先途徑。當(dāng)反應(yīng)位點聚集,且組氨酸在激活狀態(tài)保持較長時間的期間,差向異構(gòu)化的可能性增加。
二、組氨酸側(cè)鏈保護
對咪唑環(huán)的保護(圖2)通常采用在Nτ位置使用三苯甲基(Trt)基團的方式實現(xiàn)4。Trt基團因其體積大和具有吸電子性,能夠有效抑制諸如環(huán)上N-?;雀狈磻?yīng),然而在控制差向異構(gòu)化方面效果有限。其他側(cè)鏈保護基團,尤其是那些提供Nπ保護的,例如Fmoc-His(π-Mbom)-OH(5),通過阻斷α-氫的接觸途徑來減少差向異構(gòu)化。但這些衍生物的缺點在于它們本身的高成本和因多步驟合成策略導(dǎo)致的低批量供應(yīng),這種策略需要在連接Mbom基團時對Nα位置進行互斥保護。3,4,5,6此外,在肽切割過程中還需添加額外的清除劑,以防止新暴露的氨基功能團上發(fā)生羥甲基化。
本文中,Fmoc-His(Boc)-OH(6)被證實是Fmoc SPPS中組氨酸并入的寶貴替代物,因為它在高溫下對差向異構(gòu)化具有較高的穩(wěn)定性,成本低,且比其他任何市場上可購買的衍生物具有更好的批量供應(yīng)能力。
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圖2:Fmoc-SPPS用的組氨酸衍生物:Fmoc-His(Trt)-OH(4),F(xiàn)moc-His(π-Mbom)-OH(5)和Fmoc-His(Boc)-OH(6)
三、Fmoc-His(Boc)-OH的優(yōu)勢
Fmoc-His(Boc)-OH 能夠以游離酸和環(huán)己胺(CHA)鹽的形式大量購買。對于鹽形式,需要通過提取過程來移除CHA基團。鑒于這一過程相對繁瑣,我們的研究便專注于游離酸的應(yīng)用。根據(jù)先前的報告,與His(Trt) 相比,His(Boc)在差向異構(gòu)化方面的傾向性更低。7這一現(xiàn)象可以歸因于氨基甲酸酯基團較強的吸電子效應(yīng),它有效地從π子中抽取電子云密度,從而降低了其堿性。
四、討論
一項采用利拉魯肽和1-42Beta淀粉樣蛋白的可行性研究評估了-Boc基團在微波(MW)輔助固相肽合成(SPPS)過程中對差向異構(gòu)化的抑制效果及側(cè)鏈的穩(wěn)定性。肽段是在HE-SPPS條件下制備的,具體操作包括1分鐘90°C的去保護和2分鐘90°C使用DIC和Oxyma Pure進行的偶聯(lián)。8與基于尿嘧啶的激活策略相比,DIC/Oxyma Pure激活在偶聯(lián)效率和抑制差向異構(gòu)化方面提供了更優(yōu)的結(jié)果。后者的表現(xiàn)歸因于碳二亞胺活化所固有的酸性環(huán)境。9,10在室溫或稍高的條件(例如50°C)下并入組氨酸能進一步降低D-異構(gòu)體的形成,但這樣的條件對于His(Trt)仍然不夠理想。我們比較了His(Trt)和His(Boc)在使用兩種常見協(xié)議時的偶聯(lián)條件:(1)10分鐘50°C和(2)2分鐘90°C。最后,我們研究了溶液中的穩(wěn)定性,以確定其在Liberty BlueTM HT12上的高通量自動化應(yīng)用的可行性。
利拉魯肽的合成
利拉魯肽具有一個N端的組氨酸,這在與肽鏈的偶聯(lián)中存在一定難度,因此,通過微波加熱來增強?;饔檬怯幸娴?。使用三苯甲基保護在50°C下偶聯(lián)組氨酸10分鐘,結(jié)果顯示D-異構(gòu)體的形成增加到了6.8%(如表1所示)。在相同條件下,Fmoc-His(Boc)-OH顯著減少了差向異構(gòu)化,僅為0.18%。
Fmoc-His(Boc)-OH在90°C時的表現(xiàn)也相當(dāng)出色,觀察到的差向異構(gòu)化水平為0.81%,相比之下His(Trt)則大于16%。Fmoc-His(Trt)-OH和Fmoc-His(Boc)-OH都以相當(dāng)?shù)拇旨兌全@得了目標(biāo)肽(圖3)。Fmoc-His(π-Mbom)-OH在純度和D-His方面提供了與Fmoc-His(Boc)-OH相似的結(jié)果。
圖3:使用(a) Fmoc-His(Trt)-OH或(b) Fmoc-His(Boc)-OH的利拉魯肽UPLC色譜圖。組氨酸偶聯(lián)條件 = 50°C,10分鐘??偤铣蓵r間 = 2小時55分鐘
表1:利拉魯肽中組氨酸在不同偶聯(lián)條件下的D-異構(gòu)體形成情況
1-42Beta淀粉樣的合成
之前的研究表明,在長時間的哌啶處理過程中,Nτ-Boc側(cè)鏈基團顯示出不穩(wěn)定性。11為了測試高溫去保護過程中–Boc的穩(wěn)定性,我們合成了包含三個組氨酸殘基的1-42Beta淀粉樣蛋白。1-42Beta淀粉樣蛋白的合成序列是出了名的困難,需要使用特殊的偶聯(lián)試劑,即使在嚴(yán)苛條件下,產(chǎn)物純度通常也過低,無法進行分析和純化。12與常規(guī)合成方法不同,HE-SPPS即便在未優(yōu)化的條件下也能獲得木及高的粗純度。我們比較了His(Trt)和His(Boc)在50°C下偶聯(lián)10分鐘以及90°C下偶聯(lián)2分鐘的情況。His(Boc)將總合成時間從4小時24分鐘縮短到3小時58分鐘,并且將差向異構(gòu)化的比例從2.88%降低至1.29% D-異構(gòu)體(表2)。UPLC分析表明,這兩種合成方法得到的目標(biāo)產(chǎn)物在粗純度上具有可比性(圖4)。
表2:BA中His(Trt)和His(Boc)的差向異構(gòu)化情況
圖4:使用(a) His(Trt)和(b) His(Boc)的1-42 Beta淀粉樣蛋白的UPLC色譜圖
溶液中的穩(wěn)定性
在自動化高通量SPPS應(yīng)用中,要求底物能在溶液中保持溶解狀態(tài)長達(dá)10天。通常,像組氨酸這樣的反應(yīng)物由于保護基團的降解/丟失而導(dǎo)致變色和沉淀,其溶液壽命僅限于5天。在這項研究中,我們測試了組氨酸溶液(DMF,0.2 M)在大氣條件下存放10天的穩(wěn)定性(圖5)。所有樣品都迅速溶解,得到無色溶液。Fmoc-His(Trt)-OH的變色在短短24小時內(nèi)就開始出現(xiàn),并在10天的時間里加劇。10天后,Fmoc-His(π-Mbom)-OH溶液略呈黃色,而Fmoc-His(Boc)-OH溶液在研究期間保持無色。UPLC分析表明,Fmoc-His(Boc)-OH和Fmoc-His(π-Mbom)-OH保持了>99%的純度?;趶娏业淖兩?,預(yù)計在10天的研究期間Fmoc-His(Trt)-OH樣品中形成了幾種雜質(zhì)(圖6)。然而,使用質(zhì)譜對這些雜質(zhì)進行定性未能成功。
圖5:不同組氨酸衍生物溶液中的穩(wěn)定性顏色測試
圖6. 10天后DMF中組氨酸衍生物(0.2 M)的UPLC分析;(a) = Fmoc-His(Trt)-OH (b) = Fmoc-His(π-Mbom)-OH (c) = Fmoc-His(Boc)-OH
五、結(jié)論
上述數(shù)據(jù)表明,His(Boc)是一種強大的組氨酸衍生物,可以在90°C下高效偶聯(lián),提供優(yōu)良的粗純度,同時縮短偶聯(lián)時間并顯著降低差向異構(gòu)化。與其他抑制差向異構(gòu)化的N保護衍生物相比,F(xiàn)moc-His(Boc)-OH更易獲得,同時保持相當(dāng)?shù)暮铣尚阅堋?/span>總之,Fmoc-His(Boc)-OH的核心優(yōu)勢包括:
• 商業(yè)批量可用性強,價格相對于Fmoc-His(Trt)-OH更具競爭力
• 在高溫下具有低水平的差向異構(gòu)化;50°C及以下的偶聯(lián)溫度使得Fmoc-His(Boc)-OH適用于活性藥物成分的合成,無需復(fù)雜的偶聯(lián)試劑和條件13
• 優(yōu)異的溶液穩(wěn)定性;與Fmoc-His(π-Mbom)-OH相當(dāng),且優(yōu)于Fmoc-His(Trt)-OH
六、材料與方法
試劑
以下Fmoc氨基酸和樹脂購自位于Matthews,NC的CEM公司,包含所示的側(cè)鏈保護基團:Ala, Arg(Pbf), Asn(Trt), Asp(OMpe), Gln(Trt), Gly, His(Boc), His(Trt), Ile, Leu, Lys(Boc), Lys(palmitoyl-Glu-OtBu), Phe, Pro, Ser(tBu), Tyr(tBu), Val。Rink Amide ProTideTM LL, Cl-MPA ProTideTM LL, 以及Fmoc-Gly Wang PS LL樹脂也購自CEM公司。二異丙基碳二亞胺(DIC),哌啶,三氟乙酉夋(TFA),3,6-二氧雜-1,8-辛二硫醇(DODT)和三異丙基硅烷(TIS)購自Sigma-Aldrich(St. Louis, MO)。二氯甲烷(DCM),N,N-二甲基甲酰胺(DMF),無水二乙酉迷(Et2O),乙酸,高效液相色譜級水,以及乙腈購自VWR(West Chester, PA)。液相色譜-質(zhì)譜級水(H2O)和液相色譜-質(zhì)譜級乙腈(MeCN)購自Fisher Scientific(Waltham, MA)。D-異構(gòu)體通過手性GC-MS(C.A.T. GmbH)進行測定。
肽合成:利拉魯肽
在CEM Liberty Blue自動化微波肽合成器上,以0.10 mmol的規(guī)模合成了該肽。使用了0.313克Fmoc Gly Wang PS LL樹脂(0.32 meq/g置換)。去保護作用采用20%哌啶和0.1 M Oxyma Pure在DMF中執(zhí)行。偶聯(lián)反應(yīng)使用5倍過量的0.2 M Fmoc-AA、1.0 M DIC和1.0 M Oxyma Pure在DMF(CarboMAX)中進行。切割則應(yīng)用CEM Razor™高通量肽切割系統(tǒng),配比為92.5:2.5:2.5 TFA/H2O/TIS/DODT。切割后,肽通過Et2O沉淀并過夜凍干。
肽合成:1-42Beta淀粉樣蛋白
采用CEM Liberty Blue自動化微波肽合成器,以0.10 mmol的規(guī)模在0.512g Cl-MPA ProTide樹脂(0.19 meq/g置換)上合成了該肽。去保護作用使用20%哌啶和0.1 M Oxyma Pure在DMF中進行。偶聯(lián)反應(yīng)用5倍過量的0.2 M Fmoc-AA、1.0 M DIC和1.0 M Oxyma Pure在DMF(CarboMAX)中進行。切割采用CEM Razor™高通量肽切割系統(tǒng),配比為92.5:2.5:2.5 TFA/H2O/TIS/DODT。切割后,肽通過Et2O沉淀并過夜凍干。
穩(wěn)定性研究
在50毫升離心管中,制備了0.2摩爾濃度的組氨酸溶液(總共5毫升DMF),并對管進行了密封。這些溶液在實驗室環(huán)境下保持在室溫,持續(xù)10天。為了準(zhǔn)備用于超高效液相色譜-質(zhì)譜分析的樣品,將10微升的組氨酸溶液稀釋到5毫升的50/50(體積比)乙腈和水的混合溶劑中。調(diào)整進樣量,直至吸光度達(dá)到35 – 55單位。
七、參考文獻
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(12) Tickler, A. K; Clippingdale, A. B; Wade, J. D. Protein Peptide Lett. 2004, 11, 377 – 384.
(13) Bacem Application Note. Mergler, M.; Dick, F.; Vorherr, Th. Methods for Fmoc-His(Trt)-OH Resulting in Minimal Racemization.
(14) CEM Technical Note (P/N: 600837) - “Cl-MPA ProTide and Cl-TCP(Cl) ProTide Resin Loading and Protected Cleavage Procedures.
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