品牌:法國(guó) 以及美國(guó)flexcell

銷售歐美進(jìn)口各種不同基底靜態(tài)培養(yǎng)及不同基底力學(xué)刺激環(huán)境動(dòng)態(tài)培養(yǎng)裝置
一、法國(guó)基底剛度可調(diào)控微圖案培養(yǎng)產(chǎn)品

特點(diǎn)：

控制細(xì)胞的3D結(jié)構(gòu)和力學(xué)

細(xì)胞在平坦或微結(jié)構(gòu)化的軟3D環(huán)境中培養(yǎng)，以模仿體內(nèi)條件。

基材的剛度可以從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）中選擇

提供多種基材形貌（平坦，圓形孔，方形孔，凹槽等）

基于凝膠的底物已準(zhǔn)備好用于您的細(xì)胞培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)

由于細(xì)胞直接接種在特征的頂部（易于限制非遷移細(xì)胞），因此易于使用且易于使用

預(yù)涂ECM基質(zhì)（例如纖連蛋白）

適用于任何細(xì)胞培養(yǎng)底物（蓋玻片，培養(yǎng)皿，多孔板）

凝膠的光學(xué)透明性使這些底物與高分辨率光學(xué)顯微鏡系統(tǒng)兼容

可訂購(gòu)的產(chǎn)品：

1、涂有凝膠蓋玻片COVERSLIPS

---調(diào)整基材的剛度以重現(xiàn)體內(nèi)環(huán)境

提供用于細(xì)胞培養(yǎng)的聚丙烯酰胺凝膠涂層蓋玻片。
可用的基材剛度范圍類似于細(xì)胞自然嵌入的體內(nèi)機(jī)械性能。
由于蓋玻片已準(zhǔn)備就緒，可以輕松快速地培養(yǎng)細(xì)胞。
多種剛性：
從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）
隨時(shí)可用：
直接接種細(xì)胞
光學(xué)透明：
易于光學(xué)觀察

涂有纖連蛋白
與高分辨率光學(xué)顯微鏡系統(tǒng)兼容
在單的塑料袋中以水基溶液形式提供，以保持凝膠的特性
標(biāo)準(zhǔn)尺寸：24 mm圓形蓋玻片（約170μm厚度）
與灌注室兼容
規(guī)格需求可定制；
涂有凝膠蓋玻片COVERSLIPS目錄：

涂有微結(jié)構(gòu)凝膠的蓋玻片

---同時(shí)控制形狀和剛度以重現(xiàn)體內(nèi)環(huán)境

提供用于細(xì)胞培養(yǎng)的微結(jié)構(gòu)聚丙烯酰胺凝膠涂層蓋玻片。
基于凝膠的基質(zhì)包含呈開放微通道（凹槽）或孔形式的軟或剛性微結(jié)構(gòu)。
因此，可以在模擬體內(nèi)環(huán)境的地形特征和剛度的底物上培養(yǎng)細(xì)胞。
>隨時(shí)可用
直接接種細(xì)胞
>多種剛性
從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）
>廣泛的3D設(shè)計(jì)
溝槽，方孔，圓孔等

涂有纖連蛋白，因此可以使用

與高分辨率光學(xué)顯微鏡系統(tǒng)兼容

在單的塑料袋中以水基溶液形式提供，以保持凝膠的特性

提供標(biāo)準(zhǔn)形狀：凹槽和圓孔

標(biāo)準(zhǔn)尺寸：24 mm圓形蓋玻片（約170μm厚度）

與灌注室兼容

標(biāo)準(zhǔn)的24毫米圓弧形凹槽和凹槽的典型布置：
每個(gè)蓋玻片上有八個(gè)區(qū)域，其特征是寬度（凹槽）或直徑（圓孔）不同：從10μm到100μm。
結(jié)構(gòu)的深度為10μm。
下面的方案描述了圓形井的特殊情況，但是在凹槽的情況下分布相似

附加信息：

蓋玻片的尺寸可以按需修改

相同類型的凝膠可適應(yīng)培養(yǎng)皿或多孔板

可以根據(jù)需要制造其他形狀的三角形孔，方形孔或矩形孔

其他深度可根據(jù)要求制造

二、美國(guó)flexcell 基底剛度可調(diào)控的細(xì)胞拉伸加載培養(yǎng)系統(tǒng)

可拉伸細(xì)胞基底硬度控制培養(yǎng)皿（CellSoft 100mm Round Dishes）

Cells sense soft! CellSoft offers softer substrates to match the material properties of tissue niches to better meet the needs of biological laboratories wanting to grow their cells on native stiffness。

●彈性模量范圍1-80kPa

直徑100mm培養(yǎng)皿，總生長(zhǎng)表面積為57cm²

●可選多孔培養(yǎng)板、60mm和100mm培養(yǎng)皿

●BioFlex® CellSoft標(biāo)準(zhǔn)6孔板

●在柔性基底上牽拉細(xì)胞

●腔室載玻片CellSoft

●表面蛋白包被，無(wú)菌單包裝

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度，不同的孔板，用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價(jià)包被CollagenI或其他蛋白，可對(duì)細(xì)胞進(jìn)行靜態(tài)或動(dòng)態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點(diǎn)，新型的CellSoft培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細(xì)胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達(dá)三次。

●柔軟的硅膠彈性體涂層培養(yǎng)皿。
●模量范圍：1—80 kPa
●傳代細(xì)胞系擴(kuò)增的理想選擇
●光學(xué)透明，可通過(guò)倒置或直立顯微鏡直接觀察細(xì)胞（膜厚度：1000um）
●共價(jià)鍵合的表面：有氨基，膠原蛋白（I型或IV型），彈性蛋白，ProNectin（RGD）和層粘連蛋白（YIGSR）等包被涂層和未經(jīng)處理的。
●低自體熒光，可用于免疫組織化學(xué)分析或熒光探針。
●室溫下避光中或無(wú)直射光下儲(chǔ)存長(zhǎng)達(dá)1年。

1、CellSoft®bioflex可牽張拉伸剛度可調(diào)整 (1-80kpa)培養(yǎng)板 —cellsoft bioflex  6 well cuture plates

·CellSoft® BioFlex® 6-well or 24 well flexible culture plates to stretch cells on soft substrates

·Moduli range: 0.1, 5, 10, 20, 40, 200 kPa （Can be customized as required）

2、CellSoft®靜態(tài)剛度可調(diào)整 (1-80kpa)培養(yǎng)皿和多孔板

CellSoft® substrates are “softer” compared to uncoated glass or polystyrene culture plates.

背景：

“細(xì)胞喜歡柔軟！” Flexcell®創(chuàng)始人兼總裁Albert Banes博士說(shuō) ”這些年來(lái)，細(xì)胞培養(yǎng)發(fā)生了變化，但是，熱門的兩項(xiàng)創(chuàng)新是在柔性的生長(zhǎng)表面上生長(zhǎng)和拉伸細(xì)胞以及控制基材剛性的能力。 flexcell新的CellSoft培養(yǎng)產(chǎn)品進(jìn)一步推動(dòng)了這些創(chuàng)新，我們知道研究人員會(huì)喜歡這款產(chǎn)品?！?/span>

“Cells like soft!” says Flexcell® Founder and President, Dr. Albert Banes, Ph.D. “Cell culture has met with change over the years, but two of the hottest innovations have been the ability to grow and stretch cells on flexible growth surfaces and to control the rigidity of the substrate. Our new CellSoft culture ware advances those innovations even further, and we know researchers will appreciate this product.”

美國(guó)Flexcell公司于1988年商業(yè)化了彈性體生長(zhǎng)表面，并提供了根據(jù)，血管，肺或其他機(jī)械活性組織的力學(xué)來(lái)可控地拉伸細(xì)胞的方法裝置設(shè)備。 與玻璃或聚苯乙烯培養(yǎng)板相比，這些彈性體表面“柔軟”且可拉伸。 借助CellSoft，F(xiàn)lexcell®可以創(chuàng)建更柔軟的基質(zhì)，以匹配組織niche(干細(xì)胞微環(huán)境)的材料特性，并更好地滿足希望在天然剛度基材上生長(zhǎng)細(xì)胞的生物實(shí)驗(yàn)室的需求。

注釋：干細(xì)胞周圍的細(xì)胞形成像搖籃樣的環(huán)境保護(hù)著干細(xì)胞，這一環(huán)境被稱為niche。niche不僅給干細(xì)胞提供養(yǎng)分，同時(shí)還指導(dǎo)干細(xì)胞的行動(dòng)，決定干細(xì)胞的分化方向。

Flexcell® was first to commercialize elastomer growth surfaces in 1988 and to provide the means to controllably stretch cells according to the mechanics of the heart, blood vessels, lungs, or other mechanically active tissues. These elastomer surfaces are “soft” and stretchable compared to glass or polystyrene culture plates. With CellSoft, Flexcell® has created even softer substrates to match the material properties of tissue niches and better meet the needs of biological laboratories wanting to grow their cells on native stiffness substrates.

CellSoft具有各種剛度和板格式（圓盤和多孔板）。 它可以與膠原I或其他基質(zhì)共價(jià)鍵合，并已預(yù)先滅菌并可以使用。 CellSoft100 mm圓形培養(yǎng)皿非常適合用于傳代細(xì)胞和其他平板形式，包括柔性底部Bioflex®平板，以進(jìn)行靜態(tài)或動(dòng)態(tài)拉伸型實(shí)驗(yàn)。 

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度(彈性模量范圍1-80kPa)，可用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價(jià)包被Collagen I或其他蛋白，可對(duì)細(xì)胞進(jìn)行靜態(tài)或動(dòng)態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點(diǎn)，新型的CellSoft 培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細(xì)胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達(dá)三次

●彈性模量范圍1-80kPa

●可選多孔板、60mm和100mm培養(yǎng)板

●BioFlex® CellSoft標(biāo)準(zhǔn)6孔板

●在柔性基底上牽拉細(xì)胞

●腔室載玻片CellSoft

●表面蛋白包被，無(wú)菌單包裝

Amino,

 Collagen (Type I or IV), 

Elastin, 

ProNectin (RGD), 

and Laminin (YIGSR)
and untreated （未處理）

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度，不同的孔板，用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價(jià)包被CollagenI或其他蛋白，可對(duì)細(xì)胞進(jìn)行靜態(tài)或動(dòng)態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點(diǎn)，新型的CellSoft培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細(xì)胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達(dá)三次。

與flexcell FX-5000或6000T細(xì)胞牽張拉伸系統(tǒng)結(jié)合，可實(shí)現(xiàn)基底硬度控制牽張拉伸。

亮點(diǎn)：
1）該系統(tǒng)對(duì)二維、三維細(xì)胞和組織各種培養(yǎng)物提供軸向和圓周應(yīng)力加載；不但具有雙軸向拉伸力加載，還具備單軸向加力功能
2）計(jì)算機(jī)控制的應(yīng)力加載系統(tǒng)，為體外培育的細(xì)胞提供j確的、可控制的、可重復(fù)的、靜態(tài)的或者周期性的應(yīng)力變化。
3）使用真空泵，抻拉培養(yǎng)板底部的彈性硅膠模，細(xì)胞培養(yǎng)板底部高伸展度可達(dá)到33%，通過(guò)氣體裝置可以自動(dòng)調(diào)節(jié)和控制應(yīng)力。
4）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
5）可實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞、組織在應(yīng)力作用下的反應(yīng);
6）具的flexstop隔離閥可使同一塊培養(yǎng)板力的一部分培養(yǎng)孔的細(xì)胞受力，一部分培養(yǎng)孔的細(xì)胞不受力，方便對(duì)比實(shí)驗(yàn);
7）與壓力傳導(dǎo)儀整合，同時(shí)兼?zhèn)涠嗤ǖ兰?xì)胞壓力加載功能;
8）與Flex Flow平行板流室配套，可在牽拉細(xì)胞的同時(shí)施加流體切應(yīng)力;
9）多達(dá)4通道，可4個(gè)不同程序同時(shí)運(yùn)行，進(jìn)行多個(gè)不同拉伸形變率對(duì)比實(shí)驗(yàn)；
10）同一程序中可以運(yùn)行多種頻率，多種振幅和多種波形；
11）加載模擬波形種類豐富：靜態(tài)波形、正旋波形、心動(dòng)波形、三角波形、矩形以及各種特制波形；
12）更好地控制在超低或超高應(yīng)力下的波形；
13)電腦系統(tǒng)對(duì)牽張拉伸力加載周期、大小、頻率、持續(xù)時(shí)間j確智能調(diào)控
14)加載分析各種細(xì)胞在牽張拉應(yīng)力刺激下的生物化學(xué)反應(yīng)
15)伸展度范圍廣：0-33%
16)牽拉頻率范圍廣：0.01-5Hz

17）成功文獻(xiàn)達(dá)4000多篇，國(guó)內(nèi)150家單位使用。

美國(guó)Flexcell基底拓?fù)湮D案牽張拉伸培養(yǎng)系統(tǒng)，拓?fù)湮D案壓縮和流體剪切應(yīng)力，細(xì)胞微圖案牽張系統(tǒng)，細(xì)胞微圖案壓縮系統(tǒng)，細(xì)胞微圖案流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

型號(hào):美國(guó)Flexcell基底拓?fù)湮D案
品牌:美國(guó)flexcell

                  美國(guó)Flexcell基底拓?fù)湮D案牽張拉伸培養(yǎng)系統(tǒng)

美國(guó)Flexcell微圖案壓縮和流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

細(xì)胞的生命活動(dòng)受到胞外信號(hào)分子的調(diào)控,這些信號(hào)分子主要包括生物化學(xué)信號(hào)(激素、維生素等)及物理信號(hào)(彈性、流體剪切力、基質(zhì)拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)等),探究細(xì)胞是如何感知胞外信號(hào)分子并如何做出反應(yīng)是細(xì)胞生物學(xué)研究的重點(diǎn)。細(xì)胞胞外拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)是對(duì)細(xì)胞生存微環(huán)境形貌學(xué)的總稱,生物體體內(nèi)的許多組織都含有天然的...  

（另提供Flexcell基底拓?fù)湮D案壓縮和流體剪切應(yīng)力培養(yǎng)系統(tǒng)）

美國(guó)新推出細(xì)胞微圖案柔性基底膜牽張拉伸培養(yǎng)板 （6孔和24孔），使?fàn)繌埨炫囵B(yǎng)板具有仿生表面形貌，細(xì)胞能根據(jù)納米圖案的方向上延伸生長(zhǎng)。

納米圖案化牽張、壓縮培養(yǎng)表面提供細(xì)胞微環(huán)境，模仿天然細(xì)胞外基質(zhì)的對(duì)齊結(jié)構(gòu)，促進(jìn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能發(fā)展。

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  仿生對(duì)齊的納米級(jí)表面形貌

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  納米形貌取向

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亮點(diǎn)：微圖案可按需求定制

亮點(diǎn)：

1）該系統(tǒng)對(duì)二維、三維細(xì)胞和組織各種培養(yǎng)物提供軸向和圓周應(yīng)力加載；不但具有雙軸向拉伸力加載，還具備單軸向加力功能
2）計(jì)算機(jī)控制的應(yīng)力加載系統(tǒng)，為體外培育的細(xì)胞提供j確的、可控制的、可重復(fù)的、靜態(tài)的或者周期性的應(yīng)力變化。
3）使用真空泵，抻拉培養(yǎng)板底部的彈性硅膠模，細(xì)胞培養(yǎng)板底部高伸展度可達(dá)到33%，通過(guò)氣體裝置可以自動(dòng)調(diào)節(jié)和控制應(yīng)力。
4）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
5）可實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞、組織在應(yīng)力作用下的反應(yīng);
6）具的flexstop隔離閥可使同一塊培養(yǎng)板力的一部分培養(yǎng)孔的細(xì)胞受力，一部分培養(yǎng)孔的細(xì)胞不受力，方便對(duì)比實(shí)驗(yàn);
7）與壓力傳導(dǎo)儀整合，同時(shí)兼?zhèn)涠嗤ǖ兰?xì)胞壓力加載功能;
8）與Flex Flow平行板流室配套，可在牽拉細(xì)胞的同時(shí)施加流體切應(yīng)力;
9）多達(dá)4通道，可4個(gè)不同程序同時(shí)運(yùn)行，進(jìn)行多個(gè)不同拉伸形變率對(duì)比實(shí)驗(yàn)；
10）同一程序中可以運(yùn)行多種頻率，多種振幅和多種波形；
11）加載模擬波形種類豐富：靜態(tài)波形、正旋波形、心動(dòng)波形、三角波形、矩形以及各種特制波形；
12）更好地控制在超低或超高應(yīng)力下的波形；
13)電腦系統(tǒng)對(duì)牽張拉伸力加載周期、大小、頻率、持續(xù)時(shí)間j確智能調(diào)控

Flexcell拓?fù)湮D案壓縮系統(tǒng)

美國(guó)新推出細(xì)胞微圖案柔性基底膜壓縮培養(yǎng)板 （6孔），使壓縮培養(yǎng)板具有仿生表面形貌，細(xì)胞能根據(jù)納米圖案的方向上延伸生長(zhǎng)。

納米圖案化牽張、壓縮培養(yǎng)表面提供細(xì)胞微環(huán)境，模仿天然細(xì)胞外基質(zhì)的對(duì)齊結(jié)構(gòu)，促進(jìn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能發(fā)展。

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  仿生對(duì)齊的納米級(jí)表面形貌

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  納米形貌取向

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亮點(diǎn)

1）該系統(tǒng)對(duì)各種組織、三維細(xì)胞培養(yǎng)物提供周期性或靜態(tài)的壓力加載；
2）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
3）可實(shí)時(shí)觀察細(xì)胞、組織在壓力作用下的反應(yīng);
4）可有選擇性地封阻對(duì)細(xì)胞的應(yīng)力加載;

Flexcell拓?fù)湮D案流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

• 微圖案可以定制。 

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• 為細(xì)胞提供各種形式的流體切應(yīng)力：穩(wěn)流式切應(yīng)力、脈沖式切應(yīng)力或者往返式切應(yīng)力。

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• 在經(jīng)過(guò)特殊基質(zhì)蛋白包被的25x 75x 1.0mm細(xì)胞培養(yǎng)載片上培養(yǎng)細(xì)胞。

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• 多達(dá)6通道，每個(gè)通道放不同載片，可培養(yǎng)不同的細(xì)胞

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• 計(jì)算機(jī)控制的蠕動(dòng)泵可以調(diào)節(jié)切應(yīng)力大小從0-35 dynes/cm²

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• 通過(guò)Osci-Flow液體控制儀提供往返式或脈沖式流體切應(yīng)力。

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• 檢測(cè)細(xì)胞在液流作用下的排列反應(yīng)。

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• 設(shè)備易拆卸并可高溫消毒。

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• 可以在經(jīng)過(guò)特殊包被的6個(gè)細(xì)胞培養(yǎng)載片上同時(shí)培養(yǎng)細(xì)胞。

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• 提供兩個(gè)液流脈沖阻尼器。 

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四、單細(xì)胞限制器-cell confiner（Cell confinement）

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       我們的cell Confiner是一種多功能設(shè)備，可通過(guò)對(duì)細(xì)胞應(yīng)用定義明確的約束條件來(lái)研究細(xì)胞力學(xué)。限制方法基于將細(xì)胞固定在兩個(gè)平行表面之間，從而實(shí)現(xiàn)均勻且定義明確的物理參數(shù)，例如細(xì)胞幾何形狀和環(huán)境彈性。此外，可以使用高分辨率顯微鏡對(duì)受限的細(xì)胞進(jìn)行成像，因?yàn)樵撛O(shè)備是光學(xué)透明的，并將細(xì)胞保持在焦平面上。

       細(xì)胞被均勻地限制/壓縮在兩個(gè)亞微米分辨率的兩個(gè)平行表面之間。兩個(gè)表面之間的空間由微型PDMS支柱控制。 微型支柱在載玻片上制造，載玻片連接到PDMS活塞（吸盤）上。 活塞由真空泵控制，因此限制區(qū)的高度也受到控制。不同的限制高度（例如1um – 300um），允許長(zhǎng)期細(xì)胞培養(yǎng)和細(xì)胞增殖，同時(shí)保持對(duì)封閉的控制
與高分辨率光學(xué)顯微鏡系統(tǒng)兼容，可以處理足夠多的細(xì)胞以進(jìn)行完整的基因表達(dá)分析，可與生物功能化的微結(jié)構(gòu)化底物和/或不同的基質(zhì)（幾何形狀控制）結(jié)合使用
可以與凝膠結(jié)合（硬度控制），兼容任何細(xì)胞培養(yǎng)底物（培養(yǎng)皿至96孔板）。

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產(chǎn)品特性：

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>定義細(xì)胞的厚度和形狀

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用正確的限制滑片控制細(xì)胞的厚度

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>同時(shí)進(jìn)行多個(gè)實(shí)驗(yàn)

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能夠研究不同的細(xì)胞或同時(shí)應(yīng)用不同的限制條件

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>適用于高分辨率顯微鏡

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光學(xué)透明的材料和緊湊的設(shè)計(jì)可實(shí)現(xiàn)高分辨率顯微鏡

>控制限制速度

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通過(guò)真空泵j確控制限制速度

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 >可逆限制：限制后取回您的細(xì)胞

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由于細(xì)胞的非破壞性方法，可以進(jìn)行分子分析

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>與您自己的實(shí)驗(yàn)兼容

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該限制器是一種小型設(shè)備，直接放置在您的細(xì)胞培養(yǎng)液頂部

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1、典型應(yīng)用：?jiǎn)渭?xì)胞機(jī)械壓縮刺激系統(tǒng)圖

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典型應(yīng)用：

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>癌癥浸潤(rùn)測(cè)定：遷移行為和遷移轉(zhuǎn)變的量化

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>癌癥侵襲性測(cè)定：體細(xì)胞或癌細(xì)胞的收縮力定量

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>內(nèi)吞作用測(cè)定：更好地觀察膜發(fā)生的事件

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>胞吐法測(cè)定：更好地觀察在頂端膜發(fā)生的事件

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>吞噬功能失調(diào)：機(jī)制的表征

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>孔中的免疫系統(tǒng)：非粘附免疫細(xì)胞的二維遷移和相互作用

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>免疫細(xì)胞相互作用：非貼壁免疫細(xì)胞的2D相互作用

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>有絲分裂組裝測(cè)定：有絲分裂紡錘體疾病的定量

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>定量細(xì)胞遷移測(cè)定：細(xì)胞遷移特性的快速，精細(xì)分析

>癌癥研究

• 
  

轉(zhuǎn)移細(xì)胞的遷移

• 
  

轉(zhuǎn)移中的細(xì)胞收縮

• 
  

DNA DSB修復(fù)（機(jī)械誘導(dǎo)）

• 
  

基因組不穩(wěn)定（細(xì)胞分裂）

• 
  

分離共培養(yǎng)

• 
  

 >免疫學(xué)

• 
  

免疫細(xì)胞遷移

• 
  

非粘附細(xì)胞的成像

• 
  

 >器官生理學(xué)

• 
  

癌細(xì)胞遷移

• 
  

具有硬度控制的細(xì)胞區(qū)分

• 
  

傷口愈合

• 
  

分離共培養(yǎng)

• 
  

細(xì)胞壓縮反應(yīng)

• 
  

 >罕見疾病

• 
  

細(xì)胞核完整性

• 
  

 >老化

• 
  

細(xì)胞核完整性

• 
  

自噬相關(guān)疾病

• 
  

 >觀測(cè)化

• 
  

非粘附細(xì)胞的成像

• 
  

細(xì)胞器的平面成像

• 
  

 >基礎(chǔ)研究

• 
  

細(xì)胞體積（細(xì)胞周期）

• 
  

細(xì)胞機(jī)械力刺激反應(yīng)

• 
  

二維心肌細(xì)胞成熟測(cè)定
二維肝小管化驗(yàn)
3D心肌細(xì)胞成熟測(cè)定
3D肝小管測(cè)定
附著球體測(cè)定
細(xì)胞收縮力測(cè)定
細(xì)胞遷移測(cè)定
細(xì)胞核擠壓測(cè)定
細(xì)胞j化
細(xì)胞體積測(cè)量
趨化性測(cè)定
共培養(yǎng)測(cè)定
胞吞試驗(yàn)
胞吐法
外泌體測(cè)定
片狀脂蛋白和絲狀體含量測(cè)定
活細(xì)胞成像
巨噬細(xì)胞j化測(cè)定
MT依賴性運(yùn)輸測(cè)定
神經(jīng)肌肉連接測(cè)定
井中的神經(jīng)元網(wǎng)絡(luò)
細(xì)胞器定位分析
初次纖毛測(cè)定
骨骼肌細(xì)胞測(cè)定
平滑肌細(xì)胞
傷口愈合測(cè)定

PUBLICATIONS

• 
  




• 
  




• 
  

 

• 
  

• 
  

• Confinement and Low Adhesion Induce Fast Amoeboid Migration of Slow Mesenchymal Cells
  Y.-J. Liu, M. Piel, Cell, et al., 2015 160(4), 659-672

• 
  

• Actin flows induce a universal coupling between cell speed and cell persistence
  P. Maiuri, R. Voituriez, et al., Cell, 2015 161(2), 374–386

• 
  

• Geometric friction directs cell migration
  M. Le Berre, M. Piel, et al., Physical Review Letter 2013 111, 198101

• 
  

• Mitotic rounding alters cell geometry to ensure efficient spindle assembly
  O. M. Lancaster, B. Baum, et al., Developmental Cell, 2013 25(3), 270-283

• 
  

• Fine Control of Nuclear Confinement Identifies a Threshold Deformation leading to Lamina Rupture and Induction of Specific Genes
  M. Le Berre, J. Aubertin, M. Piel, Integrative Biology, 2012 4 (11), 1406-1414

• 
  

• Exploring the Function of Cell Shape and Size during Mitosis
  C. Cadart, H. K. Matthews, et al., Developmental Cell, 2014 29(2), 159-169

• 
  

• Methods for Two-Dimensional Cell Confinement
  M. Le Berre, M. Piel, et al., 2014, Micropatterning in Cell Biology Part C, Methods in cell biology, 121, 213-29

• 
  

• 
  

References

• 
  

 

• 
  

[1] D. Huh, G.A. Hamilton, and D. E. Ingber, “From 3D cell culture to organs-on-chips,” TrendsCell Biol., vol. 21, no. 12, pp. 745–754, 2011.

• 
  

[2] M. Ravi, V.Paramesh, S. R. Kaviya, E. Anuradha, and F. D. Paul Solomon, “3D cell culturesystems: Advantages and applications,” J. Cell. Physiol., vol. 230,no. 1, pp. 16–26, 2015.

• 
  

[3] J. W.Haycock, 3D cell culture: a review of current approaches andtechniques., vol. 695. 2011.

• 
  

[4] F.Pampaloni, E. G. Reynaud, and E. H. K. Stelzer, “The third dimension bridgesthe gap between cell culture and live tissue.,” Nat. Rev. Mol. CellBiol., vol. 8, no. 10, pp. 839–845, 2007.

• 
  

[5] J. Lee, M.J. Cuddihy, and N. A. Kotov, “Three-dimensional cell culture matrices: state ofthe art.,” Tissue Eng Part B Rev, vol. 14, no. 1, pp. 61–86, 2008.

• 
  

[6] M.Vinci et al., “Advances in establishment and analysis ofthree-dimensional tumor spheroid-based functional assays for target validationand drug evaluation,” BMC Biol., vol. 10, no. 1, p. 29, 2012.

• 
  

[7] B. A.Justice, N. A. Badr, and R. A. Felder, “3D cell culture opens new dimensions incell-based assays,” Drug Discov. Today, vol. 14, no. 1–2, pp.102–107, 2009.

• 
  

[8] I.Meyvantsson and D. J. Beebe, “Cell culture models in microfluidicsystems.,” Annu. Rev. Anal. Chem., vol. 1, pp. 423–449, 2008.

• 
  

[9] E. W. K.Young and D. J. Beebe, “Fundamentals of microfluidic cell culture in controlledmicroenvironments,” Chem Soc Rev, vol. 39, no. 3, pp. 1036–1048,2010.

• 
  

[10] D. J.Beebe, G. a Mensing, and G. M. Walker, “Physics and applications ofmicrofluidics in biology.,” Annu. Rev. Biomed. Eng., vol. 4, pp.261–286, 2002.

• 
  

[11] J. El-Ali,P. K. Sorger, and K. F. Jensen, “Cells on chips.,” Nature, vol.442, no. 7101, pp. 403–411, 2006.

• 
  

[12] J.Guck et al., “Optical deformability as an inherent cell marker fortesting malignant transformation and metastatic competence,” Biophys J,vol. 88, no. 5, pp. 3689–3698, 2005.

• 
  

[13] S.Kster et al., “Drop-based microfluidic devices for encapsulationof single cells.,” Lab Chip, vol. 8, no. 7, pp. 1110–1115, 2008.

• 
  

[14] H.Andersson and A. Van den Berg, “Microfluidic devices for cellomics: Areview,” Sensors Actuators, B Chem., vol. 92, no. 3, pp. 315–325,2003.

• 
  

[15] M. W.Tibbitt and K. S. Anseth, “Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cellculture,” Biotechnol. Bioeng., vol. 103, no. 4, pp. 655–663, 2009.

• 
  

[16] J. P.Vacanti and R. Langer, “Tissue engineering: the design and fabrication ofliving replacement devices for surgical reconstruction andtransplantation.,” Lancet, vol. 354, p. SI32-I34, 1999.

• 
  

[17] G. S. D.Hetal Patel, Minal Bonde, “Biodegradable polymer scaffolds for tissueengineering,” Trends Biomater. Artif. Organs, vol. 25, no. 1, pp.20–29, 2011.

• 
  

[18] L. G.Griffith and M. A. Swartz, “Capturing complex 3D tissue physiology invitro.,” Nat. Rev. Mol. cell Biol., vol. 7, no. 3, pp. 211–24,2006.

• 
  

[19] D. J.Tobin, “Scaffolds for Tissue Engineering and 3D Cell Culture,” MethodsMol. Biol., vol. 695, no. 2, pp. 213–227, 2011.

• 
  

[20] J.Naranda et al., “Polyester type polyHIPE scaffolds with an interconnectedporous structure for cartilage regeneration,” Sci. Rep., vol. 6,no. February, p. 28695, 2016.

• 
  

[21] B.Dhandayuthapani, Y. Yoshida, T. Maekawa, and D. S. Kumar, “Polymeric scaffoldsin tissue engineering application: A review,” Int. J. Polym. Sci.,vol. 2011, no. ii, 2011.

• 
  

[22] F. J.O’Brien, “Biomaterials & scaffolds for tissue engineering,” Mater.Today, vol. 14, no. 3, pp. 88–95, 2011.

• 
  

[23] A. L.Paguirigan and D. J. Beebe, “Microfluidics meet cell biology: Bridging the gap byvalidation and application of microscale techniques for cell biologicalassays,” BioEssays, vol. 30, no. 9, pp. 811–821, Sep. 2008.

• 
  

[24] F.-Q. Nie,M. Yamada, J. Kobayashi, M. Yamato, A. Kikuchi, and T. Okano, “On-chip cellmigration assay using microfluidic channels.,” Biomaterials, vol.28, no. 27, pp. 4017–4022, 2007.

• 
  

[25] A. Valster,N. L. Tran, M. Nakada, M. E. Berens, A. Y. Chan, and M. Symons, “Cell migrationand invasion assays,” Methods, vol. 37, no. 2, pp. 208–215, 2005.

• 
  

[26] C. R.Justus, N. Leffler, M. Ruiz-Echevarria, and L. V Yang, “In vitro cell migrationand invasion assays.,” J. Vis. Exp., vol. 752, no. 88, p. e51046,2014.

• 
  

[27] N.Kramer et al., “In vitro cell migration and invasionassays.,” Mutat Res, vol. 752, no. 1, pp. 10–24, 2013.

• 
  

[28] J. W. Hong,V. Studer, G. Hang, W. F. Anderson, and S. R. Quake, “A nanoliter-scale nucleicacid processor with parallel architecture.,” Nat. Biotechnol., vol.22, no. 4, pp. 435–439, 2004.

• 
  

[29] J. Q.Boedicker, L. Li, T. R. Kline, and R. F. Ismagilov, “Detecting bacteria anddetermining their susceptibility to antibiotics by stochastic confinement innanoliter droplets using plug-based microfluidics.,” Lab Chip, vol.8, no. 8, pp. 1265–1272, 2008.

• 
  

[30] G.Velve-Casquillas, M. Le Berre, M. Piel, and P. T. Tran, “Microfluidic tools forcell biological research,” Nano Today, vol. 5, no. 1. pp. 28–47,2010.

• 
  

[31] C. R.Terenna et al., “Physical Mechanisms Redirecting Cell Polarity andCell Shape in Fission Yeast,” Curr. Biol., vol. 18, no. 22, pp.1748–1753, . 2008.

• 
  

[32] G.Faure-andré, “Regulation of Dendritic Cell Migration by CD74, the MHC ClassII–Associated Invariant Chain,” Science (80-. )., vol. 1705, no.December, 2008.

• 
  

[33] S. M.McFaul, B. K. Lin, and H. Ma, “Cell separation based on size and deformabilityusing microfluidic funnel ratchets,” Lab Chip, vol. 12, no. 13, pp.2369–2376, 2012.

• 
  

[34] S. C. Hur,N. K. Henderson-MacLennan, E. R. B. McCabe, and D. Di Carlo,“Deformability-based cell classification and enrichment using inertialmicrofluidics.,” Lab Chip, vol. 11, no. 5, pp. 912–920, 2011.

• 
  

[35] H. W. Hou,Q. S. Li, G. Y. H. Lee, A. P. Kumar, C. N. Ong, and C. T. Lim, “Deformabilitystudy of breast cancer cells using microfluidics,” Biomed. Microdevices,vol. 11, no. 3, pp. 557–564, 2009.

• 
  




• 
  

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