品牌:法國 以及美國flexcell

銷售歐美進口各種不同基底靜態(tài)培養(yǎng)及不同基底力學刺激環(huán)境動態(tài)培養(yǎng)裝置
一、法國基底剛度可調(diào)控微圖案培養(yǎng)產(chǎn)品

特點：

控制細胞的3D結(jié)構(gòu)和力學

細胞在平坦或微結(jié)構(gòu)化的軟3D環(huán)境中培養(yǎng)，以模仿體內(nèi)條件。

基材的剛度可以從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）中選擇

提供多種基材形貌（平坦，圓形孔，方形孔，凹槽等）

基于凝膠的底物已準備好用于您的細胞培養(yǎng)實驗

由于細胞直接接種在特征的頂部（易于限制非遷移細胞），因此易于使用且易于使用

預(yù)涂ECM基質(zhì)（例如纖連蛋白）

適用于任何細胞培養(yǎng)底物（蓋玻片，培養(yǎng)皿，多孔板）

凝膠的光學透明性使這些底物與高分辨率光學顯微鏡系統(tǒng)兼容

可訂購的產(chǎn)品：

1、涂有凝膠蓋玻片COVERSLIPS

---調(diào)整基材的剛度以重現(xiàn)體內(nèi)環(huán)境

提供用于細胞培養(yǎng)的聚丙烯酰胺凝膠涂層蓋玻片。
可用的基材剛度范圍類似于細胞自然嵌入的體內(nèi)機械性能。
由于蓋玻片已準備就緒，可以輕松快速地培養(yǎng)細胞。
多種剛性：
從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）
隨時可用：
直接接種細胞
光學透明：
易于光學觀察

涂有纖連蛋白
與高分辨率光學顯微鏡系統(tǒng)兼容
在單的塑料袋中以水基溶液形式提供，以保持凝膠的特性
標準尺寸：24 mm圓形蓋玻片（約170μm厚度）
與灌注室兼容
規(guī)格需求可定制；
涂有凝膠蓋玻片COVERSLIPS目錄：

涂有微結(jié)構(gòu)凝膠的蓋玻片

---同時控制形狀和剛度以重現(xiàn)體內(nèi)環(huán)境

提供用于細胞培養(yǎng)的微結(jié)構(gòu)聚丙烯酰胺凝膠涂層蓋玻片。
基于凝膠的基質(zhì)包含呈開放微通道（凹槽）或孔形式的軟或剛性微結(jié)構(gòu)。
因此，可以在模擬體內(nèi)環(huán)境的地形特征和剛度的底物上培養(yǎng)細胞。
>隨時可用
直接接種細胞
>多種剛性
從非常軟（1 kPa）到非常硬（200 kPa）
>廣泛的3D設(shè)計
溝槽，方孔，圓孔等

涂有纖連蛋白，因此可以使用

與高分辨率光學顯微鏡系統(tǒng)兼容

在單的塑料袋中以水基溶液形式提供，以保持凝膠的特性

提供標準形狀：凹槽和圓孔

標準尺寸：24 mm圓形蓋玻片（約170μm厚度）

與灌注室兼容

標準的24毫米圓弧形凹槽和凹槽的典型布置：
每個蓋玻片上有八個區(qū)域，其特征是寬度（凹槽）或直徑（圓孔）不同：從10μm到100μm。
結(jié)構(gòu)的深度為10μm。
下面的方案描述了圓形井的特殊情況，但是在凹槽的情況下分布相似

附加信息：

蓋玻片的尺寸可以按需修改

相同類型的凝膠可適應(yīng)培養(yǎng)皿或多孔板

可以根據(jù)需要制造其他形狀的三角形孔，方形孔或矩形孔

其他深度可根據(jù)要求制造

二、美國flexcell 基底剛度可調(diào)控的細胞拉伸加載培養(yǎng)系統(tǒng)

可拉伸細胞基底硬度控制培養(yǎng)皿（CellSoft 100mm Round Dishes）

Cells sense soft! CellSoft offers softer substrates to match the material properties of tissue niches to better meet the needs of biological laboratories wanting to grow their cells on native stiffness。

●彈性模量范圍1-80kPa

直徑100mm培養(yǎng)皿，總生長表面積為57cm²

●可選多孔培養(yǎng)板、60mm和100mm培養(yǎng)皿

●BioFlex® CellSoft標準6孔板

●在柔性基底上牽拉細胞

●腔室載玻片CellSoft

●表面蛋白包被，無菌單包裝

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度，不同的孔板，用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價包被CollagenI或其他蛋白，可對細胞進行靜態(tài)或動態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點，新型的CellSoft培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達三次。

●柔軟的硅膠彈性體涂層培養(yǎng)皿。
●模量范圍：1—80 kPa
●傳代細胞系擴增的理想選擇
●光學透明，可通過倒置或直立顯微鏡直接觀察細胞（膜厚度：1000um）
●共價鍵合的表面：有氨基，膠原蛋白（I型或IV型），彈性蛋白，ProNectin（RGD）和層粘連蛋白（YIGSR）等包被涂層和未經(jīng)處理的。
●低自體熒光，可用于免疫組織化學分析或熒光探針。
●室溫下避光中或無直射光下儲存長達1年。

1、CellSoft®bioflex可牽張拉伸剛度可調(diào)整 (1-80kpa)培養(yǎng)板 —cellsoft bioflex  6 well cuture plates

·CellSoft® BioFlex® 6-well or 24 well flexible culture plates to stretch cells on soft substrates

·Moduli range: 0.1, 5, 10, 20, 40, 200 kPa （Can be customized as required）

2、CellSoft®靜態(tài)剛度可調(diào)整 (1-80kpa)培養(yǎng)皿和多孔板

CellSoft® substrates are “softer” compared to uncoated glass or polystyrene culture plates.

背景：

“細胞喜歡柔軟！” Flexcell®創(chuàng)始人兼總裁Albert Banes博士說 ”這些年來，細胞培養(yǎng)發(fā)生了變化，但是，熱門的兩項創(chuàng)新是在柔性的生長表面上生長和拉伸細胞以及控制基材剛性的能力。 flexcell新的CellSoft培養(yǎng)產(chǎn)品進一步推動了這些創(chuàng)新，我們知道研究人員會喜歡這款產(chǎn)品?！?/span>

“Cells like soft!” says Flexcell® Founder and President, Dr. Albert Banes, Ph.D. “Cell culture has met with change over the years, but two of the hottest innovations have been the ability to grow and stretch cells on flexible growth surfaces and to control the rigidity of the substrate. Our new CellSoft culture ware advances those innovations even further, and we know researchers will appreciate this product.”

美國Flexcell公司于1988年商業(yè)化了彈性體生長表面，并提供了根據(jù)，血管，肺或其他機械活性組織的力學來可控地拉伸細胞的方法裝置設(shè)備。 與玻璃或聚苯乙烯培養(yǎng)板相比，這些彈性體表面“柔軟”且可拉伸。 借助CellSoft，F(xiàn)lexcell®可以創(chuàng)建更柔軟的基質(zhì)，以匹配組織niche(干細胞微環(huán)境)的材料特性，并更好地滿足希望在天然剛度基材上生長細胞的生物實驗室的需求。

注釋：干細胞周圍的細胞形成像搖籃樣的環(huán)境保護著干細胞，這一環(huán)境被稱為niche。niche不僅給干細胞提供養(yǎng)分，同時還指導(dǎo)干細胞的行動，決定干細胞的分化方向。

Flexcell® was first to commercialize elastomer growth surfaces in 1988 and to provide the means to controllably stretch cells according to the mechanics of the heart, blood vessels, lungs, or other mechanically active tissues. These elastomer surfaces are “soft” and stretchable compared to glass or polystyrene culture plates. With CellSoft, Flexcell® has created even softer substrates to match the material properties of tissue niches and better meet the needs of biological laboratories wanting to grow their cells on native stiffness substrates.

CellSoft具有各種剛度和板格式（圓盤和多孔板）。 它可以與膠原I或其他基質(zhì)共價鍵合，并已預(yù)先滅菌并可以使用。 CellSoft100 mm圓形培養(yǎng)皿非常適合用于傳代細胞和其他平板形式，包括柔性底部Bioflex®平板，以進行靜態(tài)或動態(tài)拉伸型實驗。 

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度(彈性模量范圍1-80kPa)，可用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價包被Collagen I或其他蛋白，可對細胞進行靜態(tài)或動態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點，新型的CellSoft 培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達三次

●彈性模量范圍1-80kPa

●可選多孔板、60mm和100mm培養(yǎng)板

●BioFlex® CellSoft標準6孔板

●在柔性基底上牽拉細胞

●腔室載玻片CellSoft

●表面蛋白包被，無菌單包裝

Amino,

 Collagen (Type I or IV), 

Elastin, 

ProNectin (RGD), 

and Laminin (YIGSR)
and untreated （未處理）

CellSoft培養(yǎng)板有很多不同的種類，如不同的硬度，不同的孔板，用于顯微觀察的腔室載玻片（圓形多孔板），共價包被CollagenI或其他蛋白，可對細胞進行靜態(tài)或動態(tài)牽拉應(yīng)力刺激。更重要的一點，新型的CellSoft培養(yǎng)板可以反復(fù)胰酶消化和再接種細胞，蛋白包被的表面可以重復(fù)使用多達三次。

與flexcell FX-5000或6000T細胞牽張拉伸系統(tǒng)結(jié)合，可實現(xiàn)基底硬度控制牽張拉伸。

亮點：
1）該系統(tǒng)對二維、三維細胞和組織各種培養(yǎng)物提供軸向和圓周應(yīng)力加載；不但具有雙軸向拉伸力加載，還具備單軸向加力功能
2）計算機控制的應(yīng)力加載系統(tǒng)，為體外培育的細胞提供j確的、可控制的、可重復(fù)的、靜態(tài)的或者周期性的應(yīng)力變化。
3）使用真空泵，抻拉培養(yǎng)板底部的彈性硅膠模，細胞培養(yǎng)板底部高伸展度可達到33%，通過氣體裝置可以自動調(diào)節(jié)和控制應(yīng)力。
4）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
5）可實時觀察細胞、組織在應(yīng)力作用下的反應(yīng);
6）具的flexstop隔離閥可使同一塊培養(yǎng)板力的一部分培養(yǎng)孔的細胞受力，一部分培養(yǎng)孔的細胞不受力，方便對比實驗;
7）與壓力傳導(dǎo)儀整合，同時兼?zhèn)涠嗤ǖ兰毎麎毫虞d功能;
8）與Flex Flow平行板流室配套，可在牽拉細胞的同時施加流體切應(yīng)力;
9）多達4通道，可4個不同程序同時運行，進行多個不同拉伸形變率對比實驗；
10）同一程序中可以運行多種頻率，多種振幅和多種波形；
11）加載模擬波形種類豐富：靜態(tài)波形、正旋波形、心動波形、三角波形、矩形以及各種特制波形；
12）更好地控制在超低或超高應(yīng)力下的波形；
13)電腦系統(tǒng)對牽張拉伸力加載周期、大小、頻率、持續(xù)時間j確智能調(diào)控
14)加載分析各種細胞在牽張拉應(yīng)力刺激下的生物化學反應(yīng)
15)伸展度范圍廣：0-33%
16)牽拉頻率范圍廣：0.01-5Hz

17）成功文獻達4000多篇，國內(nèi)150家單位使用。

美國Flexcell基底拓撲微圖案牽張拉伸培養(yǎng)系統(tǒng)，拓撲微圖案壓縮和流體剪切應(yīng)力，細胞微圖案牽張系統(tǒng)，細胞微圖案壓縮系統(tǒng)，細胞微圖案流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

型號:美國Flexcell基底拓撲微圖案
品牌:美國flexcell

                  美國Flexcell基底拓撲微圖案牽張拉伸培養(yǎng)系統(tǒng)

美國Flexcell微圖案壓縮和流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

細胞的生命活動受到胞外信號分子的調(diào)控,這些信號分子主要包括生物化學信號(激素、維生素等)及物理信號(彈性、流體剪切力、基質(zhì)拓撲結(jié)構(gòu)等),探究細胞是如何感知胞外信號分子并如何做出反應(yīng)是細胞生物學研究的重點。細胞胞外拓撲結(jié)構(gòu)是對細胞生存微環(huán)境形貌學的總稱,生物體體內(nèi)的許多組織都含有天然的...  

（另提供Flexcell基底拓撲微圖案壓縮和流體剪切應(yīng)力培養(yǎng)系統(tǒng)）

美國新推出細胞微圖案柔性基底膜牽張拉伸培養(yǎng)板 （6孔和24孔），使牽張拉伸培養(yǎng)板具有仿生表面形貌，細胞能根據(jù)納米圖案的方向上延伸生長。

納米圖案化牽張、壓縮培養(yǎng)表面提供細胞微環(huán)境，模仿天然細胞外基質(zhì)的對齊結(jié)構(gòu)，促進細胞結(jié)構(gòu)和功能發(fā)展。

• 
  

• 
  

  仿生對齊的納米級表面形貌

• 
  

• 
  

  納米形貌取向

• 
  

亮點：微圖案可按需求定制

亮點：

1）該系統(tǒng)對二維、三維細胞和組織各種培養(yǎng)物提供軸向和圓周應(yīng)力加載；不但具有雙軸向拉伸力加載，還具備單軸向加力功能
2）計算機控制的應(yīng)力加載系統(tǒng)，為體外培育的細胞提供j確的、可控制的、可重復(fù)的、靜態(tài)的或者周期性的應(yīng)力變化。
3）使用真空泵，抻拉培養(yǎng)板底部的彈性硅膠模，細胞培養(yǎng)板底部高伸展度可達到33%，通過氣體裝置可以自動調(diào)節(jié)和控制應(yīng)力。
4）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
5）可實時觀察細胞、組織在應(yīng)力作用下的反應(yīng);
6）具的flexstop隔離閥可使同一塊培養(yǎng)板力的一部分培養(yǎng)孔的細胞受力，一部分培養(yǎng)孔的細胞不受力，方便對比實驗;
7）與壓力傳導(dǎo)儀整合，同時兼?zhèn)涠嗤ǖ兰毎麎毫虞d功能;
8）與Flex Flow平行板流室配套，可在牽拉細胞的同時施加流體切應(yīng)力;
9）多達4通道，可4個不同程序同時運行，進行多個不同拉伸形變率對比實驗；
10）同一程序中可以運行多種頻率，多種振幅和多種波形；
11）加載模擬波形種類豐富：靜態(tài)波形、正旋波形、心動波形、三角波形、矩形以及各種特制波形；
12）更好地控制在超低或超高應(yīng)力下的波形；
13)電腦系統(tǒng)對牽張拉伸力加載周期、大小、頻率、持續(xù)時間j確智能調(diào)控

Flexcell拓撲微圖案壓縮系統(tǒng)

美國新推出細胞微圖案柔性基底膜壓縮培養(yǎng)板 （6孔），使壓縮培養(yǎng)板具有仿生表面形貌，細胞能根據(jù)納米圖案的方向上延伸生長。

納米圖案化牽張、壓縮培養(yǎng)表面提供細胞微環(huán)境，模仿天然細胞外基質(zhì)的對齊結(jié)構(gòu)，促進細胞結(jié)構(gòu)和功能發(fā)展。

• 
  

• 
  

  仿生對齊的納米級表面形貌

• 
  

• 
  

  納米形貌取向

• 
  

亮點

1）該系統(tǒng)對各種組織、三維細胞培養(yǎng)物提供周期性或靜態(tài)的壓力加載；
2）基于柔性膜基底變形、受力均勻;
3）可實時觀察細胞、組織在壓力作用下的反應(yīng);
4）可有選擇性地封阻對細胞的應(yīng)力加載;

Flexcell拓撲微圖案流體剪切應(yīng)力系統(tǒng)

• 微圖案可以定制。 

• 
  




• 
  




• 
  

• 為細胞提供各種形式的流體切應(yīng)力：穩(wěn)流式切應(yīng)力、脈沖式切應(yīng)力或者往返式切應(yīng)力。

• 
  

• 在經(jīng)過特殊基質(zhì)蛋白包被的25x 75x 1.0mm細胞培養(yǎng)載片上培養(yǎng)細胞。

• 
  

• 多達6通道，每個通道放不同載片，可培養(yǎng)不同的細胞

• 
  

• 計算機控制的蠕動泵可以調(diào)節(jié)切應(yīng)力大小從0-35 dynes/cm²

• 
  

• 通過Osci-Flow液體控制儀提供往返式或脈沖式流體切應(yīng)力。

• 
  

• 檢測細胞在液流作用下的排列反應(yīng)。

• 
  

• 設(shè)備易拆卸并可高溫消毒。

• 
  

• 可以在經(jīng)過特殊包被的6個細胞培養(yǎng)載片上同時培養(yǎng)細胞。

• 
  

• 提供兩個液流脈沖阻尼器。 

• 
  




• 
  

四、單細胞限制器-cell confiner（Cell confinement）

• 
  




• 
  

       我們的cell Confiner是一種多功能設(shè)備，可通過對細胞應(yīng)用定義明確的約束條件來研究細胞力學。限制方法基于將細胞固定在兩個平行表面之間，從而實現(xiàn)均勻且定義明確的物理參數(shù)，例如細胞幾何形狀和環(huán)境彈性。此外，可以使用高分辨率顯微鏡對受限的細胞進行成像，因為該設(shè)備是光學透明的，并將細胞保持在焦平面上。

       細胞被均勻地限制/壓縮在兩個亞微米分辨率的兩個平行表面之間。兩個表面之間的空間由微型PDMS支柱控制。 微型支柱在載玻片上制造，載玻片連接到PDMS活塞（吸盤）上。 活塞由真空泵控制，因此限制區(qū)的高度也受到控制。不同的限制高度（例如1um – 300um），允許長期細胞培養(yǎng)和細胞增殖，同時保持對封閉的控制
與高分辨率光學顯微鏡系統(tǒng)兼容，可以處理足夠多的細胞以進行完整的基因表達分析，可與生物功能化的微結(jié)構(gòu)化底物和/或不同的基質(zhì)（幾何形狀控制）結(jié)合使用
可以與凝膠結(jié)合（硬度控制），兼容任何細胞培養(yǎng)底物（培養(yǎng)皿至96孔板）。

• 
  




• 
  

產(chǎn)品特性：

• 
  




• 
  

>定義細胞的厚度和形狀

• 
  

用正確的限制滑片控制細胞的厚度

• 
  

>同時進行多個實驗

• 
  

能夠研究不同的細胞或同時應(yīng)用不同的限制條件

• 
  

>適用于高分辨率顯微鏡

• 
  

光學透明的材料和緊湊的設(shè)計可實現(xiàn)高分辨率顯微鏡

>控制限制速度

• 
  

通過真空泵j確控制限制速度

• 
  

 >可逆限制：限制后取回您的細胞

• 
  

由于細胞的非破壞性方法，可以進行分子分析

• 
  

>與您自己的實驗兼容

• 
  

該限制器是一種小型設(shè)備，直接放置在您的細胞培養(yǎng)液頂部

• 
  




• 
  

1、典型應(yīng)用：單細胞機械壓縮刺激系統(tǒng)圖

• 
  



• 
  




• 
  

典型應(yīng)用：

• 
  




• 
  

>癌癥浸潤測定：遷移行為和遷移轉(zhuǎn)變的量化

• 
  

>癌癥侵襲性測定：體細胞或癌細胞的收縮力定量

• 
  

>內(nèi)吞作用測定：更好地觀察膜發(fā)生的事件

• 
  

>胞吐法測定：更好地觀察在頂端膜發(fā)生的事件

• 
  

>吞噬功能失調(diào)：機制的表征

• 
  

>孔中的免疫系統(tǒng)：非粘附免疫細胞的二維遷移和相互作用

• 
  

>免疫細胞相互作用：非貼壁免疫細胞的2D相互作用

• 
  

>有絲分裂組裝測定：有絲分裂紡錘體疾病的定量

• 
  

>定量細胞遷移測定：細胞遷移特性的快速，精細分析

>癌癥研究

• 
  

轉(zhuǎn)移細胞的遷移

• 
  

轉(zhuǎn)移中的細胞收縮

• 
  

DNA DSB修復(fù)（機械誘導(dǎo)）

• 
  

基因組不穩(wěn)定（細胞分裂）

• 
  

分離共培養(yǎng)

• 
  

 >免疫學

• 
  

免疫細胞遷移

• 
  

非粘附細胞的成像

• 
  

 >器官生理學

• 
  

癌細胞遷移

• 
  

具有硬度控制的細胞區(qū)分

• 
  

傷口愈合

• 
  

分離共培養(yǎng)

• 
  

細胞壓縮反應(yīng)

• 
  

 >罕見疾病

• 
  

細胞核完整性

• 
  

 >老化

• 
  

細胞核完整性

• 
  

自噬相關(guān)疾病

• 
  

 >觀測化

• 
  

非粘附細胞的成像

• 
  

細胞器的平面成像

• 
  

 >基礎(chǔ)研究

• 
  

細胞體積（細胞周期）

• 
  

細胞機械力刺激反應(yīng)

• 
  

二維心肌細胞成熟測定
二維肝小管化驗
3D心肌細胞成熟測定
3D肝小管測定
附著球體測定
細胞收縮力測定
細胞遷移測定
細胞核擠壓測定
細胞j化
細胞體積測量
趨化性測定
共培養(yǎng)測定
胞吞試驗
胞吐法
外泌體測定
片狀脂蛋白和絲狀體含量測定
活細胞成像
巨噬細胞j化測定
MT依賴性運輸測定
神經(jīng)肌肉連接測定
井中的神經(jīng)元網(wǎng)絡(luò)
細胞器定位分析
初次纖毛測定
骨骼肌細胞測定
平滑肌細胞
傷口愈合測定

PUBLICATIONS

• 
  




• 
  




• 
  

 

• 
  

• 
  

• Confinement and Low Adhesion Induce Fast Amoeboid Migration of Slow Mesenchymal Cells
  Y.-J. Liu, M. Piel, Cell, et al., 2015 160(4), 659-672

• 
  

• Actin flows induce a universal coupling between cell speed and cell persistence
  P. Maiuri, R. Voituriez, et al., Cell, 2015 161(2), 374–386

• 
  

• Geometric friction directs cell migration
  M. Le Berre, M. Piel, et al., Physical Review Letter 2013 111, 198101

• 
  

• Mitotic rounding alters cell geometry to ensure efficient spindle assembly
  O. M. Lancaster, B. Baum, et al., Developmental Cell, 2013 25(3), 270-283

• 
  

• Fine Control of Nuclear Confinement Identifies a Threshold Deformation leading to Lamina Rupture and Induction of Specific Genes
  M. Le Berre, J. Aubertin, M. Piel, Integrative Biology, 2012 4 (11), 1406-1414

• 
  

• Exploring the Function of Cell Shape and Size during Mitosis
  C. Cadart, H. K. Matthews, et al., Developmental Cell, 2014 29(2), 159-169

• 
  

• Methods for Two-Dimensional Cell Confinement
  M. Le Berre, M. Piel, et al., 2014, Micropatterning in Cell Biology Part C, Methods in cell biology, 121, 213-29

• 
  

• 
  

References

• 
  

 

• 
  

[1] D. Huh, G.A. Hamilton, and D. E. Ingber, “From 3D cell culture to organs-on-chips,” TrendsCell Biol., vol. 21, no. 12, pp. 745–754, 2011.

• 
  

[2] M. Ravi, V.Paramesh, S. R. Kaviya, E. Anuradha, and F. D. Paul Solomon, “3D cell culturesystems: Advantages and applications,” J. Cell. Physiol., vol. 230,no. 1, pp. 16–26, 2015.

• 
  

[3] J. W.Haycock, 3D cell culture: a review of current approaches andtechniques., vol. 695. 2011.

• 
  

[4] F.Pampaloni, E. G. Reynaud, and E. H. K. Stelzer, “The third dimension bridgesthe gap between cell culture and live tissue.,” Nat. Rev. Mol. CellBiol., vol. 8, no. 10, pp. 839–845, 2007.

• 
  

[5] J. Lee, M.J. Cuddihy, and N. A. Kotov, “Three-dimensional cell culture matrices: state ofthe art.,” Tissue Eng Part B Rev, vol. 14, no. 1, pp. 61–86, 2008.

• 
  

[6] M.Vinci et al., “Advances in establishment and analysis ofthree-dimensional tumor spheroid-based functional assays for target validationand drug evaluation,” BMC Biol., vol. 10, no. 1, p. 29, 2012.

• 
  

[7] B. A.Justice, N. A. Badr, and R. A. Felder, “3D cell culture opens new dimensions incell-based assays,” Drug Discov. Today, vol. 14, no. 1–2, pp.102–107, 2009.

• 
  

[8] I.Meyvantsson and D. J. Beebe, “Cell culture models in microfluidicsystems.,” Annu. Rev. Anal. Chem., vol. 1, pp. 423–449, 2008.

• 
  

[9] E. W. K.Young and D. J. Beebe, “Fundamentals of microfluidic cell culture in controlledmicroenvironments,” Chem Soc Rev, vol. 39, no. 3, pp. 1036–1048,2010.

• 
  

[10] D. J.Beebe, G. a Mensing, and G. M. Walker, “Physics and applications ofmicrofluidics in biology.,” Annu. Rev. Biomed. Eng., vol. 4, pp.261–286, 2002.

• 
  

[11] J. El-Ali,P. K. Sorger, and K. F. Jensen, “Cells on chips.,” Nature, vol.442, no. 7101, pp. 403–411, 2006.

• 
  

[12] J.Guck et al., “Optical deformability as an inherent cell marker fortesting malignant transformation and metastatic competence,” Biophys J,vol. 88, no. 5, pp. 3689–3698, 2005.

• 
  

[13] S.Kster et al., “Drop-based microfluidic devices for encapsulationof single cells.,” Lab Chip, vol. 8, no. 7, pp. 1110–1115, 2008.

• 
  

[14] H.Andersson and A. Van den Berg, “Microfluidic devices for cellomics: Areview,” Sensors Actuators, B Chem., vol. 92, no. 3, pp. 315–325,2003.

• 
  

[15] M. W.Tibbitt and K. S. Anseth, “Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cellculture,” Biotechnol. Bioeng., vol. 103, no. 4, pp. 655–663, 2009.

• 
  

[16] J. P.Vacanti and R. Langer, “Tissue engineering: the design and fabrication ofliving replacement devices for surgical reconstruction andtransplantation.,” Lancet, vol. 354, p. SI32-I34, 1999.

• 
  

[17] G. S. D.Hetal Patel, Minal Bonde, “Biodegradable polymer scaffolds for tissueengineering,” Trends Biomater. Artif. Organs, vol. 25, no. 1, pp.20–29, 2011.

• 
  

[18] L. G.Griffith and M. A. Swartz, “Capturing complex 3D tissue physiology invitro.,” Nat. Rev. Mol. cell Biol., vol. 7, no. 3, pp. 211–24,2006.

• 
  

[19] D. J.Tobin, “Scaffolds for Tissue Engineering and 3D Cell Culture,” MethodsMol. Biol., vol. 695, no. 2, pp. 213–227, 2011.

• 
  

[20] J.Naranda et al., “Polyester type polyHIPE scaffolds with an interconnectedporous structure for cartilage regeneration,” Sci. Rep., vol. 6,no. February, p. 28695, 2016.

• 
  

[21] B.Dhandayuthapani, Y. Yoshida, T. Maekawa, and D. S. Kumar, “Polymeric scaffoldsin tissue engineering application: A review,” Int. J. Polym. Sci.,vol. 2011, no. ii, 2011.

• 
  

[22] F. J.O’Brien, “Biomaterials & scaffolds for tissue engineering,” Mater.Today, vol. 14, no. 3, pp. 88–95, 2011.

• 
  

[23] A. L.Paguirigan and D. J. Beebe, “Microfluidics meet cell biology: Bridging the gap byvalidation and application of microscale techniques for cell biologicalassays,” BioEssays, vol. 30, no. 9, pp. 811–821, Sep. 2008.

• 
  

[24] F.-Q. Nie,M. Yamada, J. Kobayashi, M. Yamato, A. Kikuchi, and T. Okano, “On-chip cellmigration assay using microfluidic channels.,” Biomaterials, vol.28, no. 27, pp. 4017–4022, 2007.

• 
  

[25] A. Valster,N. L. Tran, M. Nakada, M. E. Berens, A. Y. Chan, and M. Symons, “Cell migrationand invasion assays,” Methods, vol. 37, no. 2, pp. 208–215, 2005.

• 
  

[26] C. R.Justus, N. Leffler, M. Ruiz-Echevarria, and L. V Yang, “In vitro cell migrationand invasion assays.,” J. Vis. Exp., vol. 752, no. 88, p. e51046,2014.

• 
  

[27] N.Kramer et al., “In vitro cell migration and invasionassays.,” Mutat Res, vol. 752, no. 1, pp. 10–24, 2013.

• 
  

[28] J. W. Hong,V. Studer, G. Hang, W. F. Anderson, and S. R. Quake, “A nanoliter-scale nucleicacid processor with parallel architecture.,” Nat. Biotechnol., vol.22, no. 4, pp. 435–439, 2004.

• 
  

[29] J. Q.Boedicker, L. Li, T. R. Kline, and R. F. Ismagilov, “Detecting bacteria anddetermining their susceptibility to antibiotics by stochastic confinement innanoliter droplets using plug-based microfluidics.,” Lab Chip, vol.8, no. 8, pp. 1265–1272, 2008.

• 
  

[30] G.Velve-Casquillas, M. Le Berre, M. Piel, and P. T. Tran, “Microfluidic tools forcell biological research,” Nano Today, vol. 5, no. 1. pp. 28–47,2010.

• 
  

[31] C. R.Terenna et al., “Physical Mechanisms Redirecting Cell Polarity andCell Shape in Fission Yeast,” Curr. Biol., vol. 18, no. 22, pp.1748–1753, . 2008.

• 
  

[32] G.Faure-andré, “Regulation of Dendritic Cell Migration by CD74, the MHC ClassII–Associated Invariant Chain,” Science (80-. )., vol. 1705, no.December, 2008.

• 
  

[33] S. M.McFaul, B. K. Lin, and H. Ma, “Cell separation based on size and deformabilityusing microfluidic funnel ratchets,” Lab Chip, vol. 12, no. 13, pp.2369–2376, 2012.

• 
  

[34] S. C. Hur,N. K. Henderson-MacLennan, E. R. B. McCabe, and D. Di Carlo,“Deformability-based cell classification and enrichment using inertialmicrofluidics.,” Lab Chip, vol. 11, no. 5, pp. 912–920, 2011.

• 
  

[35] H. W. Hou,Q. S. Li, G. Y. H. Lee, A. P. Kumar, C. N. Ong, and C. T. Lim, “Deformabilitystudy of breast cancer cells using microfluidics,” Biomed. Microdevices,vol. 11, no. 3, pp. 557–564, 2009.

• 
  




• 
  

我公司專注生物力學和生物打印等生物醫(yī)學工程科研服務(wù)-10年經(jīng)驗支持,
點擊查更多科研工具-應(yīng)用盡有

•